- •Введение.
- •1Этиологическая структура внебольничных пневмоний
- •1.1Полученные результаты
- •Распределение результатов обследования больных внебольничной пневмонией на монкультуру и ассоциации основных возбудителей
- •Распределение основных возбудителей внебольничных пневмоний, выделенных у больных в монокультуре и в ассоциации в группах больных первого и второго годов службы.
- •2Микробиологическая диагностика основных возбудителей внебольничной пневмонии
- •2.1Основные возбудители: краткая микробиологическая характеристика и клиническая значимость
- •2.2Забор материала
- •2.2.1Мокрота.
- •2.3Микроскопия нативного материала
- •2.3.1Бактериоскопическая диагностика
- •2.4Культуральная диагностика
- •2.4.1Среды, оптимальные для культивирования
- •2.4.1.2Среды, пригодные для культивирования s.Pyogenes.
- •2.4.1.3Среды, пригодные для культивирования h.Influenzae
- •2.4.1.3.1Шоколадный агар для выделения и идентификации h.Influenzae
- •2.4.1.3.2Шоколадный бульон
- •2.4.1.3.3Двухфазная среда для посева крови и спинномозговой жидкости
- •2.4.1.3.4Нтм агар
- •2.4.1.4Среды, пригодные для культивирования m. Сatarrhalis
- •2.4.2Идентификация выделенных возбудителей
- •2.4.2.2.1Идентификация Haemophilus influenzae
- •7.Тест на определение o-нитрофенил-бета--d-галактопиранозидазы (onpg, бета-галактозидазы)
- •8.Тест на продукцию цитохромоксидазы
- •10. Идентификация h.Influenzae с использованием X и V факторов
- •2.4.2.2.2Биотипирование h.Influenzae.
- •Биотипирование h.Influenzae
- •3Серологическая диагностика и серотипирование
- •Серотипирование выделенных штаммов пневмококка основными групповыми сыворотками (%)
- •4Резистентность к антибактериальным препаратам основных возбудителей внебольничных пневмоний
- •4.3Полученные результаты
- •Чувствительность к антибиотикам среди выделенных штаммов пневмококка, выделенных от больных
- •Частота выделения штаммов, резистентных к антибактериальным препаратам
- •5Атипичные возбудители пневмоний
- •5.1Методы диагностики пневмоний , вызванных атипичными возбудителями
- •Лабораторная диагностика инфекций, вызванных м.Pneumoniae
- •5.1.1Среды, применяемые для культуральной диагностики атипичных возбудителей внебольничных пневмоний
- •Йодометрический метод определения пенициллиназной активности микроорганизмов в бульоне.
2.4.2.2.1Идентификация Haemophilus influenzae
После инкубации в течение 24 ч колонии H.influenzae на шоколадном агаре могут иметь следующие формы:
капсульные штаммы формируют слизистые, круглые, сочные, сероватого цвета, иррадиирующие (дающие радужную окраску) в проходящем свете колонии диаметром до 2 мм. Штаммы с менее выраженной капсулой образуют полупрозрачные, круглые, гладкие, неиррадиирующие колонии;
неинкапсулированные штаммы образуют мелкие, непрозрачные, неиррадиирующие колонии с неровными краями.
Для чистой культуры гемофильной палочки характерно наличие специфического "мышиного" запаха.
H.influenzae обладают цитохромоксидазной и каталазной активностью и нуждаются в X и V факторах, что является одним из основных качеств, отличающих их от других представителей рода гемофил.
Потребность H.influenzae в указанных факторах определяется с помощью полосок или дисков с X и V факторами. При их отсутствии можно воспользоваться тестом с сапонином или определением способности к сателлитному росту (метод "кормушек").
Необходимые тесты для идентификации чистой культуры:
Тест с сапонином;
Тест на способность к саттелитному росту;
Тест на образование уреазы;
Тест на индолообразование;
Тест на орнитинобоазование.
1.Тест с сапонином основан на способности сапонина лизировать эритроциты. Сапонин приводит к высвобождению находящихся в эртроцитах X и V факторов, что обеспечивает рост гемофильной палочки.
Диск с сапонином помещают на поверхность 5% КА, инокулированного испытуемой культурой (суспензией в изотоническом растворе хлорида натрия). Результаты теста учитывают через 24–48 ч инкубации при температуре 35–37оС и 5–10% СО2.
Рост колоний вокруг дисков с сапонином и его отсутствие вне зоны гемолиза служит дифференциальным признаком принадлежности исследуемого микроорганизма к роду Haemophilus.
2.Тест на способность к сателлитному росту (метод "кормушек"). Принцип метода "кормушек" аналогичен описанному выше методу дисков с сапонином. Поверхность 5% КА инокулируют суспензией тестируемой культуры в изотоническом растворе хлорида натрия, после чего наносят две параллельные линии гемолитического штамма S.aureus (расстояние между линиями – 5–6 мм). После инкубации при температуре 35–37оС в атмосфере с повышенным (5–10%) содержанием СО2 в течение 18–24 ч рост колоний (в виде валика) в зоне гемолиза, вызванного S.aureus, указывает на принадлежность исследуемого микроорганизма к Haemophilus spp.
3.Определение бета-галактозидазы. Важным диагностическим тестом для идентификации H.influenzae является тест на наличие бета-галактозидазной активности. Гемофильная палочка не обладает этим ферментом. Таким образом, на основании данного теста она может быть дифференцирована от других видов гемофил, нуждающихся в X и V факторах.
4.Тест на определение уреазы. Используются 2 реактива. Реактив А: стерильная дистиллированная вода – 4 мл, этиловый спирт 96% – 2 мл, мочевина – 2 г. Реактив В: 0,2% раствор фенол-рот – 1 мл, KH2PO4 – 0,1 г, K2HPO4 – 0,1 г, NaCl – 0,5 г, дистиллированная вода – 100 мл.
Приготовление. Реактив А хранится при температуре 4–10оС (не автоклавировать!). Реактив В стерилизуют при 1,5 атм. 30 мин. Перед употреблением ex tempore смешать 1 часть реактива А и 19 частей реактива В.
Приготовленную ex tempore смесь реактивов А и Б разливают в узкие пробирки по 0,1 мл и вносят несколько капель густой суспензии исследуемой культуры H.influenzae в питательном бульоне. Пробирки помещают в термостат при температуре 35–37оС. Предварительный учет возможен через 30 мин.
При положительной реакции среда приобретает малиново-красное окрашивание, при отрицательной – цвет не меняется. Учет отрицательной реакции возможен только после 24 ч инкубации.
5.Тест на определение индолообразования. Для определения способности бактерий образовывать индол необходимо использовать среды, содержащие триптофан. В пробирку с суточной культурой исследуемого штамма H.influenzae, суспензированного в питательном бульоне (шоколадный бульон), помещают индикаторную индольную тест-полоску, пропитанную реактивом, так чтобы она находилась над поверхностью суспензии. Инкубируют при температуре 35–37оC в течение 18–24 ч. При положительном результате появляется розовое окрашивание тест-полоски.
Индикаторные индольные тест-полоски
Состав:
р-диметиламидобензальдегид – 3,0–5,0 г;
этиловый спирт 96% – 50 мл;
концентрированная H2PO4 – 10 мл.
Приготовление. Ингредиенты растирают в ступке и перемешивают. Готовым раствором пропитывают фильтровальную бумагу, высушивают и нарезают полосками.
6.Тест на наличие орнитиндекарбоксилазы. При определении орнитиндекарбоксилазы используются диски с орнитином (СИБ, bioMerieux, BBL). Диск помещают в пробирку с 0,3–0,5 мл физиологического раствора и добавляют несколько капель суточной бульонной культуры H.influenzae, после чего заливают стерильным вазелиновым маслом и инкубируют в течение 18–24 ч при температуре 35–37оС.
При положительном результате появляется синее или интенсивное зеленое окрашивание.