Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

2 курс / Нормальная физиология / Физиология_крови_Липунова_Е_А_,_Скоркина_М_Ю_

.pdf
Скачиваний:
2
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
6.7 Mб
Скачать

%

15

10

5 0 -5

-10

-15 30 90 150 210 270 330 390 450 510 570 900 3600 c

Рис. 38. Динамика разницы коэффициента резервной поверхности эритроцитов ( %) между опытной и контрольной пробами

Блокада кальциевых каналов верапамилом индуцирует включение внутриклеточных адаптационных механизмов с участием внутриклеточного кальция, высвобождаемого из цитоскелета клеточных мембран и внутриклеточных органоидов. Появление функционально неполноценных форм клеток на 150 с экспозиции совпадает с влиянием повреждающего агента на популяцию старых клеток. Вторая волна вызвана включением внутриклеточных механизмов регуляции, развивающихся в связи с отсутствием экзогенного Са2+. По литературным данным, в присутствии антагонистов Са2+ (верапамила) начинается самопроизвольный ток ионов Na+ в клетки (П.В. Авдонин, В.А. Ткачук, 1994). В эритроцитах лягушек R. Ridibunda установлены низкое содержание Na+ (12,2±0,8 ммоль/л клеток) и высокая концентрация К+ (90,1±1,9 ммоль/л клеток), при этом концентрация Na+ и К+ в эритроцитах лягушек достоверно стабильна в разные сезоны года (Н..И. Агалакова и соавт., 1996). Таким образом, самопроизвольный ток Na+ по Са2+-каналам в присутствии кальциевого антагониста, снижающего сродство Са2+ и блокирующего его вход, теоретически будет приводить к развитию деполяризации мембраны и изменению ее заряда.

В поддержании объема эритроцитов основную роль отводят ионам К+, большая часть которых поступает в клеткучерез К+-Cl-ко- транспорт (Н.И. Агалакова, 1996). Не исключено, что наблюдаемые нами циклические процессы в динамике формы клеток и их коэффициента резервной поверхности, а также появление пиков, связанных с массовой деструкцией клеточных мембран, являются

231

показателем конкурентных потоков ионов в клетку и, как следствие, развития деполяризации мембраны, причем по скорости выраженности наблюдается различная динамика, не исключено в связи с последовательным вовлечением в процесс целого спектра каналов переноса. Мы полагаем, что первые 120 с инкубации, пока устанавливается связь в комплексе рецептор – верапамил, поток Na+ в клетки зависит от диффузионной компоненты. В последующие 180 с Na+ поступает через Са2+-каналы и Na+/H+- обменник, в результате чего клетки сжимаются, что подтверждается снижением коэффициента эксцентричности и коэффициента резервной поверхности. В следующие 120 с развивается активный внутриклеточный ответ, связанный с выкачиванием Na+ из клетки посредством Na+-K+-насоса, и не исключено, что с участием Na+/H+-обменника (поскольку, по литературным данным, он обеспечивают реверсивный ток ионов), в результате чего увеличиваются коэффициент эксцентричности и коэффициент резервной поверхности клеток, эритроциты пытаются восстановить свою форму.

Фармакологический эффект, развивающийся в организме in vivo, начинается с клеточного уровня. Наиболее мобильной интегральной системой, вовлекаемой в реакцию, является периферическая кроветворная ткань. Эритроциты – универсальные транспортеры – будут моментально реагировать на введение химического вещества. В условиях in vitro мы моделируем ситуацию не просто транспортировки эритроцитами экзогенного вещества, но и инициируем фармакологическую реакцию, основанную на усилении или угнетении физиологических процессов, которые реализуются на базе определенной клеточной структуры.

Нами установлено, что первоначальная реакция на воздействие верапамила – снижение сорбционной способности эритроцитов вследствие адсорбции препарата на клеточной поверхности. По литературным данным, адсорбция характеризуется обратимостью, в основе ее лежат все типы непрочных связей: ван-дер- ваальсовы, водородные, ионные, дипольные. Поскольку опыт был поставлен in vitro, исключались движение крови по микроциркуляторному руслу и реализация механизма десорбции верапамила эндотелиальными стенками сосудов. В результате представилась возможность наблюдать прямые эффекты блокатора

232

Са2+-каналов на эритроцитарные мембраны, т. е. влияние вещества после образования прочных ковалентных связей с клеточной поверхностью.

Входе проведенных экспериментов установлена высокая чувствительность клеточной поверхности к действию кальциевого антагониста. Быстрота морфологических перестроек эритроцитарной популяции находилась в пределах 30 с, при этом в ре-

акцию вовлекались либо magnulocutys, либо teretiocutys; eliptocutys реагировали через 330 с. Не исключено, что для эритроцитарной популяции форма клеток eliptocutys является афизиологической и появляется in vitro на стекле или в пробирке в условиях инкубации при измененной температуре, рН среды, отсутствии глюкозы и воздействии других факторов. Возможно, что вначале определенная субклеточная популяция адаптировалась к измененным факторам среды, а затем реагировала на верапамил, что отразилось на скорости реакции. С другой стороны, нельзя исключить предположения, что eliptocutys – физиологически зрелая

иустойчивая субпопуляция эритроцитарной системы, поэтому имеет достаточно совершенный адаптационный резерв, участвующий в поддержании формы клетки, тогда на 330 с инкубации, когда эта субпопуляция вовлекается в реакцию, можно полагать функциональное истощение этого резерва.

Вотношении динамики формы клеток и коэффициента резервной поверхности нами продемонстрирована цикличность. Первоначальная реакция связана с разнонаправленным характером эффектов – увеличением коэффициента эксцентричности на фоне снижения коэффициента резервной поверхности через 30 с инкубации. Впоследствии динамика этих параметров была однонаправленной и выражалась в снижении коэффициента резервной поверхности и коэффициента эксцентричности до 330 с, затем их увеличении в период с 330 до 420 с экспозиции и ростом коэффициента эксцентричности на фоне снижения коэффициента резервной поверхности до истечения времени инкубации.

Отмеченные флуктуации морфологии эритроцитов и их временную зависимость мы связываем с влиянием верапамила на

конкурентные транспортные ионные потоки. По косвенному параметру (рН среды) нами установлена стимуляция Na+/H+-

обменника в эритроцитарных мембранах лягушек, в результате чего в среду активно выкачивается водород в обмен на Na+. Со-

233

гласно литературным данным, ингибирующее влияние антагонистов Са2+ связывают с уменьшением деполяризации мембраны. Такая интерпретация была дана в работе C. Randiamampita et al. (1991) по ингибированию нитрендипином Са2+-входа в Т-лимфо- циты. На тромбоцитах показано, что кальциевые антагонисты не блокируют, а модулируют рецепторуправляемые каналы, подавляя вход Са2+ и активируя ток Na+. В работах П.В. Авдонина, В.А. Ткачука (1994) отмечается, что такая ситуация создается вследствие уменьшения сродства каналов к Са2+, при этом в присутствии антагонистов начинается самопроизвольный ток Na+ в клетки, который ингибирует ток Са2+. Эта гипотетическая схема наиболее подходит для объяснения полученных нами результатов.

Сопоставив рассмотренные гипотезы, результаты опытов Н.И. Агалаковой (1996) по транспорту одновалентных катионов через эритроцитарные мембраны лягушек Rana ridibunda с собственными результатами, приходим к выводу, что верапамил действительно активирует работу Na+/H+-обменника, в итоге клетки сжимаются, что отражается на их геометрических характеристиках. Не исключено, что ток Na+ в клетку вызывает деполяризацию мембраны и смену ее заряда. Цикличность в изменении формы клеток как раз связана, по всей видимости, с разновременным включением транспортных мембранных каналов. Установлено, что поток Na+ в эритроцитах Rana ridibunda происходит за счет диффузионной компоненты, а также посредством активации Na+/H+-обменника. В то же время конкурентный ток К+ осуществляется через Na+-K+- насос, K+-Cl--переносчик и диффузионную компоненту. Таким образом, включение различных ионных транспортеров отражается на форме клетки и поверхностном заряде ее мембраны. При этом физиологические эффекты верапамила на систему эритрона не выходят за пределы эволюционно выработанных физиологических функций и связаны с функционированием адаптационных клеточных механизмов на уровне транспортных ионных систем мембран.

3.5.3.3. Функциональный профиль эритроцитарной системы лягушек при блокаде β-адренорецепторов. Реактивность живых систем к фармакологическим агентам, широко применяемым в экспериментальной биологии и медицине, определяется спецификой метаболизма, структуры и нейрогуморальной регуляцией функций. С использованием фармакологических средств

234

воспроизводятся модели патологических состояний и создаются условия для анализа физиологических функций при отклонении гомеостатических параметров среды от оптимального для метаболизма уровня (В.В. Гацура, А.С. Саратиков, 1977).

Фармакологический эффект препарата, возникающий в целом организме, начинается с действия лекарственного вещества на клетки, изменяя их мембранную проницаемость, в связи с чем в качестве модели для изучения реализации внутриклеточных механизмов ионного обмена со средой, отражающихся на морфологии клетки, нами использовались эритроциты лягушек Rana ridibunda. По литературным данным, мембраны ядерных эритроцитов земноводных содержат систему β-адренорецепторов и активность некоторых ионтранспортирующих систем в клетках красной крови регулируется катехоламинами. Стимулирующее действие катехоламинов устраняется антагонистами β-адрено- рецепторов (Н.И. Агалакова, 1996).

Пропранолол является неизбирательным блокатором β-адре- норецепторов, одновременно воздействуя на β1- и β2-адрено- рецепторы (В.Г. Граник, 2001). В литературе имеются сведения о наличии атипичных β-адренорецепторов в эритроцитах лягушек, которые обладают одновременным сходством с β1- и β2-адреноре- цепторами высших животных (П.В. Сергеев, Н.Л. Шимановский, 1987). Учитывая это, мы проанализировали динамику морфометрического профиля эритроцитов в гипотонической среде при преинкубации их с пропранололом. Установлено, что под влиянием пропранолола через 30 с снижается коэффициент эксцентричности на фоне резкого повышения толщины, площади поверхности и объема клеток (табл. 18, 19).

Наиболее значимые различия между опытной и контрольной пробами отмечались на 30, 120, 240 и 3600 с. Так, на 30 с в опытной пробе коэффициент эксцентричности снижался на 16,83% (р<0,001), а толщина, площадь поверхности и объем клетки возрастали соответственно на 64,43; 85,44; 94,55%, а коэффициент резервной поверхности под влиянием пропранолола снижался на 40,29% (р<0,001). Через 120 с инкубации коэффициент эксцентричности в опытной пробе снижался на 20,92% (р<0,001), толщина, площадь поверхности и объем клетки повышались на

61,97; 84,03; 94,03% (р<0,001), коэффициент резервной поверх-

ности снижался на 34,32% (р<0,001) по сравнению с контрольной. На 240 с инкубации коэффициент резервной поверхности

235

повышался на 23,20%, толщина, объем и площадь поверхности возрастали соответственно на 63,46; 94,04; 84,43%; коэффициент эксцентричности снижался на 34,84% (р<0,001). К концу инкубации (3600 с) в опытной пробе коэффициент эксцентричности снижался на 15,39% (р<0,001), толщина, площадь поверхности,

объем увеличивались на 60,47; 82,55; 92,74% (р<0,001), коэффи-

циент эксцентричности снижался на 37,11% (р<0,001) по сравнению с контролем.

Таблица 18

Морфологический профиль крови лягушек

(физиологические условия, n = 50)

Время

 

S, мкм2

 

V, мкм3

 

инкуба-

ε

Т, мкм

CRS

ции, с

 

 

 

 

 

30

0,713±0,015

112,67±3,48

2,01±0,035

109,89±5,18

0,929±0,020

60

0,753±0,008

117,69±2,57

2,029±0,03

116,012±3,87

1,018±0,011

 

 

 

 

 

 

90

0,744±0,009

122,44±2,78

2,08±0,027

123,55±4,22

1,006±0,013

120

0,736±0,009

120,39±2,49

2,067±0,022

120,52±3,64

0,995±0,013

150

0,741±0,008

125,06±2,59

2,106±0,023

127,63±3,84

1,00±0,011

180

0,735±0,007

121,23±2,57

2,07±0,022

122,70±3,80

0,993±0,010

 

 

 

 

 

 

210

0,728±0,008

120,60±2,57

2,074±0,024

122,02±3,72

0,984±0,117

240

0,737±0,008

118,25±2,36

2,048±0,02

117,64±3,42

0,995±0,011

 

 

 

 

 

 

270

0,724±0,008

119,96±2,55

2,075±0,02

120,98±3,77

0,979±0,011

300

0,7200±0,008

124,00±2,31

2,114±0,019

126,69±3,40

0,973±0,011

 

 

 

 

 

 

330

0,699±0,010

122,56±2,36

2,12±0,019

125,071±3,46

0,945±0,014

360

0,702±0,011

120,27±2,58

2,094±0,021

121,92±3,75

0,948±0,014

 

 

 

 

 

 

390

0,697±0,01

114,89±2,83

2,054±0,023

114,18±4,13

0,943±0,014

420

0,709±0,008

120,12±2,64

2,093±0,022

122,06±3,86

0,958±0,011

450

0,707±0,009

119,43±2,65

2,08±0,022

120,85±3,84

0,955±0,013

480

0,715±0,008

116,97±2,72

2,054±0,02

117,53±3,84

0,965±0,011

 

 

 

 

 

 

510

0,712±0,009

117,87±2,42

2,067±0,021

118,09±3,48

0,962±0,012

540

0,691±0,010

110,06±2,61

2,019±0,022

107,07±3,70

0,933±0,014

 

 

 

 

 

 

570

0,688±0,011

117,14±2,41

2,081±0,020

117,48±3,48

0,929±0,015

600

0,703±0,009

118,68±2,27

2,087±0,019

119,13±3,34

0,949±0,013

 

 

 

 

 

 

900

0,650±0,013

118,14±2,88

2,105±0,021

119,98±4,14

0,878±0,018

1800

0,661±0,013

116,65±2,49

2,104±0,021

116,68±3,48

0,893±0,018

 

 

 

 

 

 

3600

0,682±0,017

127,25±4,73

2,17±0,039

134,34±7,19

0,922±0,022

Примечание: ε – коэффициент эксцентричности, S – площадь поверхности; V – объем, Т – толщина, CRS – коэффициент резервной поверхности.

236

 

 

 

 

 

Таблица 19

 

Морфологический профиль крови лягушек

 

 

под влиянием пропранолола (n = 200)*

 

 

 

 

 

 

 

Время

 

 

 

 

 

инку-

ε

S, мкм2

Т, мкм

V, мкм3

CRS

ба-

 

 

 

 

 

ции, с

 

 

 

 

 

30

0,593±0,025

774,13±28,41

5,66±0,14

2014,63±114,02

1,56±0,057

60

0,582±0,029

773,77±32,662

5,65±0,15

2023,54±127,00

1,55±0,065

90

0,601±0,024

791,28±34,54

5,68±0,15

2095,30±139,97

1,59±0,069

120

0,582±0,032

753,67±50,80

5,45±0,29

2017,88±175,33

1,51±0,102

150

0,585±0,028

801,04±36,08

5,74±0,17

2137,45±141,72

1,610±0,072

180

0,566±0,021

709,82±30,88

5,43±0,14

1799,76±111,22

1,426±0,062

210

0,555±0,023

769,07±30,83

5,67±0,13

2019,68±113,43

1,546±0,061

240

0,566±0,024

759,67±29,18

5,61±0,12

1973,92±112,36

1,527±0,058

270

0,559±0,024

716,93±31,86

5,48±0,15

1814,44±122,80

1,44±0,064

300

0,589±0,024

684,00±29,63

5,30±0,14

1688,08±112,37

1,375±0,059

330

0,576±0,021

730,60±29,11

5,51±0,13

1859,94±106,84

1,468±0,058

360

0,604±0,025

647,68±32,63

5,13±0,17

1560,24±118,43

1,302±0,065

390

0,588±0,032

638,88±28,29

5,09±0,16

1519,46±104,98

1,284±0,057

420

0,549±0,025

648,31±26,29

5,24±0,12

1558,00±93,73

1,303±0,052

450

0,576±0,024

660,77±29,18

5,23±0,15

1610,35±107,54

1,328±0,058

480

0,598±0,024

652,50±30,03

5,16±0,15

1574,24±107,71

1,311±0,060

510

0,592±0,024

654,74±26,11

5,18±0,13

1578,26±92,86

1,316±0,052

540

0,577±0,023

623,53±29,15

5,06±0,15

1484,00±101,14

1,253±0,058

570

0,589±0,020

609,04±23,70

5,00±0,13

1419,21±78,67

1,224±0,047

600

0,55±0,026

689,84±24,69

5,38±0,12

1708,13±89,45

1,386±0,049

900

0,537±0,027

668,65±25,47

5,31±0,13

1633,74±93,92

1,344±0,051

1800

0,559±0,027

695,97±33,21

5,38±0,14

1739,35±128,25

1,398±0,067

3600

0,576±0,022

729,17±25,09

5,49±0,11

1851,38±92,81

1,466±0,050

Примечание: обозначения, как в табл. 18.

* Статистическая значимость достоверности различия с исходными данными при р<0,001; критерий Стьюдента.

Наблюдаемые эффекты пропранолола на морфологический профиль эритроцитов мы связываем с влиянием блокатора на проницаемость эритроцитарной мембраны для ионов и изменением транспортных ионных потоков в клетку. В работах Н.И. Агалаковой (1996) показано ингибирование пропранололом транспорта К+ в эритроциты. При этом показано, что поток К+ в эритроцит лягушек вносит Cl-зависимый транспорт. К-Сl-котранспорт обеспечивает

237

основную часть поступления К+ в клетку и участвует в регуляции внутриклеточного содержания ионов и объема клеток.

Таким образом, наблюдаемое нами резкое увеличение объема и потеря формы клеток, вероятно, связаны с ингибированием К-Сl- котранспорта. Указанный транспортный путь высокочувствителен к изменению температуры окружающей среды по сравнению с Na-K-АТФазой. В эритроцитах летних лягушек К-Сl-котранспорт будет первой мишенью для пропранолола. Увеличение объема клетки, площади поверхности и толщины в условиях действия пропранолола мы связываем с химической природой этого вещества и способностью его хорошо растворяться в липидах.

При связывании пропранолола с β-адренорецепторами происходит стабилизация мембраны за счет изменения транспорта ионов. В частности, пропранолол блокирует фосфорилирование G-белков цитоскелета, в результате чего поток кальция в клетку прекращается. Кроме того, учитывая, что кальциевые каналы эритроцитарных мембран являются рецепторуправляемыми (С.А. Сторожок и соавт., 1997), под влиянием пропранолола не происходит активация инозитол-1,4,5-трифосфата и поток кальция в клетку тормозится.

Реактивность эритроцитов крови лягушек в ответ на изменение состава среды при добавлении 0,27·10-3 ммоль/л пропранолола (неселективный блокатор β-адренорецепторов) отражена на-

рис. 39.

GΔTк

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0,6

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0,5

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0,4

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0,3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0,2

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0,1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

30

90

150

210

0,27

330

390

450

510

570

900

3600

c

Рис. 39. Динамика клеточного ответа на блокаду мембранных β-адренорецепторов

238

Первая реакция эритроцитов отмечается через 90 с инкубации, в которую вовлекаются клетки с высокопроницаемой мембраной. По данным литературы (Н.И. Агалакова, 1996), показано ингибирование пропранололом транспорта К+ в эритроциты. К-Сl-котранспорт обеспечивает основную часть поступления К+ в эритроцит и участвует в регуляции внутриклеточного содержания ионов и объема клеток. Наблюдаемая реакционная способность эритроцитов на 90, 150 и 210 с связана с ингибицией К-Сl-котрнспорта. Начиная с 270 с и по 450 с наблюдается следующая волна вовлечения эритроцитов в ответ на воздействие пропранолола, что связано с химической природой этого вещества и способностью его растворяться в липидах биологических мембран. В течение этого временного интервала пропранолол массово проникает через плазмолемму, изменяя вязкоэластические свойства липидного бислоя и блокируя деятельность β-адренорецепторов. Кроме того, в липидном бислое пропранолол образует дополнительные кластеры проницаемости. Заключительная волна реактивности эритроцитов наблюдается на 3600 с инкубации и совпадает с включением функционально активных эритроцитов.

Учитывая резкое повышение коэффициента резервной поверхности через 20 с инкубации, мы не исключаем повышенной реакционной способности клеток на фармакокинетический агент. Через 30 с количество функционально неполноценных клеток в условиях действия пропранолола повышалось в 8 раз, через 60 с – в 9 раз. Следовательно, рост коэффициента резервной поверхности на фоне сокращения коэффициента формы клеток свидетельствует о развитии гемолитических процессов в системе. На 180 с количество форм с дестабилизированной мембраной составило 79,41% (в контроле – 23,45%). Наблюдаемое явление сохранялось до конца инкубации (рис. 40).

Таким образом, блокада β-адренорецепторов неспецифическим блокатором пропранололом в дозе 0,27·10-3 ммоль/л приводит к физиологической дисфункции эритроцитов.

239

%

100

80

60

40

20

0

30

120

210

300

390

480

570

1800

с

контроль опыт

Рис. 40. Динамика функционально неполноценных форм эритроцитов при воздействии пропранолола и гипотонии

С эволюционной точки зрения, возможно, наблюдаемая реакция закономерна, поскольку всё многообразие лекарственных препаратов вызывает изменение физиологических систем клеток, которые генетически сложились в ходе эволюции. В конкретном случае пропранолол изменяет протекание физиологических процессов по пути торможения К-Cl-котранспорта, что является главной причиной морфологической дисфункции в период весенне-летней вспышки гемопоэза.

240