2 курс / Нормальная физиология / Физиология_крови_Липунова_Е_А_,_Скоркина_М_Ю_
.pdf%
15
10
5 0 -5
-10
-15 30 90 150 210 270 330 390 450 510 570 900 3600 c
Рис. 38. Динамика разницы коэффициента резервной поверхности эритроцитов ( %) между опытной и контрольной пробами
Блокада кальциевых каналов верапамилом индуцирует включение внутриклеточных адаптационных механизмов с участием внутриклеточного кальция, высвобождаемого из цитоскелета клеточных мембран и внутриклеточных органоидов. Появление функционально неполноценных форм клеток на 150 с экспозиции совпадает с влиянием повреждающего агента на популяцию старых клеток. Вторая волна вызвана включением внутриклеточных механизмов регуляции, развивающихся в связи с отсутствием экзогенного Са2+. По литературным данным, в присутствии антагонистов Са2+ (верапамила) начинается самопроизвольный ток ионов Na+ в клетки (П.В. Авдонин, В.А. Ткачук, 1994). В эритроцитах лягушек R. Ridibunda установлены низкое содержание Na+ (12,2±0,8 ммоль/л клеток) и высокая концентрация К+ (90,1±1,9 ммоль/л клеток), при этом концентрация Na+ и К+ в эритроцитах лягушек достоверно стабильна в разные сезоны года (Н..И. Агалакова и соавт., 1996). Таким образом, самопроизвольный ток Na+ по Са2+-каналам в присутствии кальциевого антагониста, снижающего сродство Са2+ и блокирующего его вход, теоретически будет приводить к развитию деполяризации мембраны и изменению ее заряда.
В поддержании объема эритроцитов основную роль отводят ионам К+, большая часть которых поступает в клеткучерез К+-Cl–-ко- транспорт (Н.И. Агалакова, 1996). Не исключено, что наблюдаемые нами циклические процессы в динамике формы клеток и их коэффициента резервной поверхности, а также появление пиков, связанных с массовой деструкцией клеточных мембран, являются
231
показателем конкурентных потоков ионов в клетку и, как следствие, развития деполяризации мембраны, причем по скорости выраженности наблюдается различная динамика, не исключено в связи с последовательным вовлечением в процесс целого спектра каналов переноса. Мы полагаем, что первые 120 с инкубации, пока устанавливается связь в комплексе рецептор – верапамил, поток Na+ в клетки зависит от диффузионной компоненты. В последующие 180 с Na+ поступает через Са2+-каналы и Na+/H+- обменник, в результате чего клетки сжимаются, что подтверждается снижением коэффициента эксцентричности и коэффициента резервной поверхности. В следующие 120 с развивается активный внутриклеточный ответ, связанный с выкачиванием Na+ из клетки посредством Na+-K+-насоса, и не исключено, что с участием Na+/H+-обменника (поскольку, по литературным данным, он обеспечивают реверсивный ток ионов), в результате чего увеличиваются коэффициент эксцентричности и коэффициент резервной поверхности клеток, эритроциты пытаются восстановить свою форму.
Фармакологический эффект, развивающийся в организме in vivo, начинается с клеточного уровня. Наиболее мобильной интегральной системой, вовлекаемой в реакцию, является периферическая кроветворная ткань. Эритроциты – универсальные транспортеры – будут моментально реагировать на введение химического вещества. В условиях in vitro мы моделируем ситуацию не просто транспортировки эритроцитами экзогенного вещества, но и инициируем фармакологическую реакцию, основанную на усилении или угнетении физиологических процессов, которые реализуются на базе определенной клеточной структуры.
Нами установлено, что первоначальная реакция на воздействие верапамила – снижение сорбционной способности эритроцитов вследствие адсорбции препарата на клеточной поверхности. По литературным данным, адсорбция характеризуется обратимостью, в основе ее лежат все типы непрочных связей: ван-дер- ваальсовы, водородные, ионные, дипольные. Поскольку опыт был поставлен in vitro, исключались движение крови по микроциркуляторному руслу и реализация механизма десорбции верапамила эндотелиальными стенками сосудов. В результате представилась возможность наблюдать прямые эффекты блокатора
232
Са2+-каналов на эритроцитарные мембраны, т. е. влияние вещества после образования прочных ковалентных связей с клеточной поверхностью.
Входе проведенных экспериментов установлена высокая чувствительность клеточной поверхности к действию кальциевого антагониста. Быстрота морфологических перестроек эритроцитарной популяции находилась в пределах 30 с, при этом в ре-
акцию вовлекались либо magnulocutys, либо teretiocutys; eliptocutys реагировали через 330 с. Не исключено, что для эритроцитарной популяции форма клеток eliptocutys является афизиологической и появляется in vitro на стекле или в пробирке в условиях инкубации при измененной температуре, рН среды, отсутствии глюкозы и воздействии других факторов. Возможно, что вначале определенная субклеточная популяция адаптировалась к измененным факторам среды, а затем реагировала на верапамил, что отразилось на скорости реакции. С другой стороны, нельзя исключить предположения, что eliptocutys – физиологически зрелая
иустойчивая субпопуляция эритроцитарной системы, поэтому имеет достаточно совершенный адаптационный резерв, участвующий в поддержании формы клетки, тогда на 330 с инкубации, когда эта субпопуляция вовлекается в реакцию, можно полагать функциональное истощение этого резерва.
Вотношении динамики формы клеток и коэффициента резервной поверхности нами продемонстрирована цикличность. Первоначальная реакция связана с разнонаправленным характером эффектов – увеличением коэффициента эксцентричности на фоне снижения коэффициента резервной поверхности через 30 с инкубации. Впоследствии динамика этих параметров была однонаправленной и выражалась в снижении коэффициента резервной поверхности и коэффициента эксцентричности до 330 с, затем их увеличении в период с 330 до 420 с экспозиции и ростом коэффициента эксцентричности на фоне снижения коэффициента резервной поверхности до истечения времени инкубации.
Отмеченные флуктуации морфологии эритроцитов и их временную зависимость мы связываем с влиянием верапамила на
конкурентные транспортные ионные потоки. По косвенному параметру (рН среды) нами установлена стимуляция Na+/H+-
обменника в эритроцитарных мембранах лягушек, в результате чего в среду активно выкачивается водород в обмен на Na+. Со-
233
гласно литературным данным, ингибирующее влияние антагонистов Са2+ связывают с уменьшением деполяризации мембраны. Такая интерпретация была дана в работе C. Randiamampita et al. (1991) по ингибированию нитрендипином Са2+-входа в Т-лимфо- циты. На тромбоцитах показано, что кальциевые антагонисты не блокируют, а модулируют рецепторуправляемые каналы, подавляя вход Са2+ и активируя ток Na+. В работах П.В. Авдонина, В.А. Ткачука (1994) отмечается, что такая ситуация создается вследствие уменьшения сродства каналов к Са2+, при этом в присутствии антагонистов начинается самопроизвольный ток Na+ в клетки, который ингибирует ток Са2+. Эта гипотетическая схема наиболее подходит для объяснения полученных нами результатов.
Сопоставив рассмотренные гипотезы, результаты опытов Н.И. Агалаковой (1996) по транспорту одновалентных катионов через эритроцитарные мембраны лягушек Rana ridibunda с собственными результатами, приходим к выводу, что верапамил действительно активирует работу Na+/H+-обменника, в итоге клетки сжимаются, что отражается на их геометрических характеристиках. Не исключено, что ток Na+ в клетку вызывает деполяризацию мембраны и смену ее заряда. Цикличность в изменении формы клеток как раз связана, по всей видимости, с разновременным включением транспортных мембранных каналов. Установлено, что поток Na+ в эритроцитах Rana ridibunda происходит за счет диффузионной компоненты, а также посредством активации Na+/H+-обменника. В то же время конкурентный ток К+ осуществляется через Na+-K+- насос, K+-Cl--переносчик и диффузионную компоненту. Таким образом, включение различных ионных транспортеров отражается на форме клетки и поверхностном заряде ее мембраны. При этом физиологические эффекты верапамила на систему эритрона не выходят за пределы эволюционно выработанных физиологических функций и связаны с функционированием адаптационных клеточных механизмов на уровне транспортных ионных систем мембран.
3.5.3.3. Функциональный профиль эритроцитарной системы лягушек при блокаде β-адренорецепторов. Реактивность живых систем к фармакологическим агентам, широко применяемым в экспериментальной биологии и медицине, определяется спецификой метаболизма, структуры и нейрогуморальной регуляцией функций. С использованием фармакологических средств
234
воспроизводятся модели патологических состояний и создаются условия для анализа физиологических функций при отклонении гомеостатических параметров среды от оптимального для метаболизма уровня (В.В. Гацура, А.С. Саратиков, 1977).
Фармакологический эффект препарата, возникающий в целом организме, начинается с действия лекарственного вещества на клетки, изменяя их мембранную проницаемость, в связи с чем в качестве модели для изучения реализации внутриклеточных механизмов ионного обмена со средой, отражающихся на морфологии клетки, нами использовались эритроциты лягушек Rana ridibunda. По литературным данным, мембраны ядерных эритроцитов земноводных содержат систему β-адренорецепторов и активность некоторых ионтранспортирующих систем в клетках красной крови регулируется катехоламинами. Стимулирующее действие катехоламинов устраняется антагонистами β-адрено- рецепторов (Н.И. Агалакова, 1996).
Пропранолол является неизбирательным блокатором β-адре- норецепторов, одновременно воздействуя на β1- и β2-адрено- рецепторы (В.Г. Граник, 2001). В литературе имеются сведения о наличии атипичных β-адренорецепторов в эритроцитах лягушек, которые обладают одновременным сходством с β1- и β2-адреноре- цепторами высших животных (П.В. Сергеев, Н.Л. Шимановский, 1987). Учитывая это, мы проанализировали динамику морфометрического профиля эритроцитов в гипотонической среде при преинкубации их с пропранололом. Установлено, что под влиянием пропранолола через 30 с снижается коэффициент эксцентричности на фоне резкого повышения толщины, площади поверхности и объема клеток (табл. 18, 19).
Наиболее значимые различия между опытной и контрольной пробами отмечались на 30, 120, 240 и 3600 с. Так, на 30 с в опытной пробе коэффициент эксцентричности снижался на 16,83% (р<0,001), а толщина, площадь поверхности и объем клетки возрастали соответственно на 64,43; 85,44; 94,55%, а коэффициент резервной поверхности под влиянием пропранолола снижался на 40,29% (р<0,001). Через 120 с инкубации коэффициент эксцентричности в опытной пробе снижался на 20,92% (р<0,001), толщина, площадь поверхности и объем клетки повышались на
61,97; 84,03; 94,03% (р<0,001), коэффициент резервной поверх-
ности снижался на 34,32% (р<0,001) по сравнению с контрольной. На 240 с инкубации коэффициент резервной поверхности
235
повышался на 23,20%, толщина, объем и площадь поверхности возрастали соответственно на 63,46; 94,04; 84,43%; коэффициент эксцентричности снижался на 34,84% (р<0,001). К концу инкубации (3600 с) в опытной пробе коэффициент эксцентричности снижался на 15,39% (р<0,001), толщина, площадь поверхности,
объем увеличивались на 60,47; 82,55; 92,74% (р<0,001), коэффи-
циент эксцентричности снижался на 37,11% (р<0,001) по сравнению с контролем.
Таблица 18
Морфологический профиль крови лягушек
(физиологические условия, n = 50)
Время |
|
S, мкм2 |
|
V, мкм3 |
|
инкуба- |
ε |
Т, мкм |
CRS |
||
ции, с |
|
|
|
|
|
30 |
0,713±0,015 |
112,67±3,48 |
2,01±0,035 |
109,89±5,18 |
0,929±0,020 |
60 |
0,753±0,008 |
117,69±2,57 |
2,029±0,03 |
116,012±3,87 |
1,018±0,011 |
|
|
|
|
|
|
90 |
0,744±0,009 |
122,44±2,78 |
2,08±0,027 |
123,55±4,22 |
1,006±0,013 |
120 |
0,736±0,009 |
120,39±2,49 |
2,067±0,022 |
120,52±3,64 |
0,995±0,013 |
150 |
0,741±0,008 |
125,06±2,59 |
2,106±0,023 |
127,63±3,84 |
1,00±0,011 |
180 |
0,735±0,007 |
121,23±2,57 |
2,07±0,022 |
122,70±3,80 |
0,993±0,010 |
|
|
|
|
|
|
210 |
0,728±0,008 |
120,60±2,57 |
2,074±0,024 |
122,02±3,72 |
0,984±0,117 |
240 |
0,737±0,008 |
118,25±2,36 |
2,048±0,02 |
117,64±3,42 |
0,995±0,011 |
|
|
|
|
|
|
270 |
0,724±0,008 |
119,96±2,55 |
2,075±0,02 |
120,98±3,77 |
0,979±0,011 |
300 |
0,7200±0,008 |
124,00±2,31 |
2,114±0,019 |
126,69±3,40 |
0,973±0,011 |
|
|
|
|
|
|
330 |
0,699±0,010 |
122,56±2,36 |
2,12±0,019 |
125,071±3,46 |
0,945±0,014 |
360 |
0,702±0,011 |
120,27±2,58 |
2,094±0,021 |
121,92±3,75 |
0,948±0,014 |
|
|
|
|
|
|
390 |
0,697±0,01 |
114,89±2,83 |
2,054±0,023 |
114,18±4,13 |
0,943±0,014 |
420 |
0,709±0,008 |
120,12±2,64 |
2,093±0,022 |
122,06±3,86 |
0,958±0,011 |
450 |
0,707±0,009 |
119,43±2,65 |
2,08±0,022 |
120,85±3,84 |
0,955±0,013 |
480 |
0,715±0,008 |
116,97±2,72 |
2,054±0,02 |
117,53±3,84 |
0,965±0,011 |
|
|
|
|
|
|
510 |
0,712±0,009 |
117,87±2,42 |
2,067±0,021 |
118,09±3,48 |
0,962±0,012 |
540 |
0,691±0,010 |
110,06±2,61 |
2,019±0,022 |
107,07±3,70 |
0,933±0,014 |
|
|
|
|
|
|
570 |
0,688±0,011 |
117,14±2,41 |
2,081±0,020 |
117,48±3,48 |
0,929±0,015 |
600 |
0,703±0,009 |
118,68±2,27 |
2,087±0,019 |
119,13±3,34 |
0,949±0,013 |
|
|
|
|
|
|
900 |
0,650±0,013 |
118,14±2,88 |
2,105±0,021 |
119,98±4,14 |
0,878±0,018 |
1800 |
0,661±0,013 |
116,65±2,49 |
2,104±0,021 |
116,68±3,48 |
0,893±0,018 |
|
|
|
|
|
|
3600 |
0,682±0,017 |
127,25±4,73 |
2,17±0,039 |
134,34±7,19 |
0,922±0,022 |
Примечание: ε – коэффициент эксцентричности, S – площадь поверхности; V – объем, Т – толщина, CRS – коэффициент резервной поверхности.
236
|
|
|
|
|
Таблица 19 |
|
Морфологический профиль крови лягушек |
|
|||
|
под влиянием пропранолола (n = 200)* |
|
|||
|
|
|
|
|
|
Время |
|
|
|
|
|
инку- |
ε |
S, мкм2 |
Т, мкм |
V, мкм3 |
CRS |
ба- |
|
|
|
|
|
ции, с |
|
|
|
|
|
30 |
0,593±0,025 |
774,13±28,41 |
5,66±0,14 |
2014,63±114,02 |
1,56±0,057 |
60 |
0,582±0,029 |
773,77±32,662 |
5,65±0,15 |
2023,54±127,00 |
1,55±0,065 |
90 |
0,601±0,024 |
791,28±34,54 |
5,68±0,15 |
2095,30±139,97 |
1,59±0,069 |
120 |
0,582±0,032 |
753,67±50,80 |
5,45±0,29 |
2017,88±175,33 |
1,51±0,102 |
150 |
0,585±0,028 |
801,04±36,08 |
5,74±0,17 |
2137,45±141,72 |
1,610±0,072 |
180 |
0,566±0,021 |
709,82±30,88 |
5,43±0,14 |
1799,76±111,22 |
1,426±0,062 |
210 |
0,555±0,023 |
769,07±30,83 |
5,67±0,13 |
2019,68±113,43 |
1,546±0,061 |
240 |
0,566±0,024 |
759,67±29,18 |
5,61±0,12 |
1973,92±112,36 |
1,527±0,058 |
270 |
0,559±0,024 |
716,93±31,86 |
5,48±0,15 |
1814,44±122,80 |
1,44±0,064 |
300 |
0,589±0,024 |
684,00±29,63 |
5,30±0,14 |
1688,08±112,37 |
1,375±0,059 |
330 |
0,576±0,021 |
730,60±29,11 |
5,51±0,13 |
1859,94±106,84 |
1,468±0,058 |
360 |
0,604±0,025 |
647,68±32,63 |
5,13±0,17 |
1560,24±118,43 |
1,302±0,065 |
390 |
0,588±0,032 |
638,88±28,29 |
5,09±0,16 |
1519,46±104,98 |
1,284±0,057 |
420 |
0,549±0,025 |
648,31±26,29 |
5,24±0,12 |
1558,00±93,73 |
1,303±0,052 |
450 |
0,576±0,024 |
660,77±29,18 |
5,23±0,15 |
1610,35±107,54 |
1,328±0,058 |
480 |
0,598±0,024 |
652,50±30,03 |
5,16±0,15 |
1574,24±107,71 |
1,311±0,060 |
510 |
0,592±0,024 |
654,74±26,11 |
5,18±0,13 |
1578,26±92,86 |
1,316±0,052 |
540 |
0,577±0,023 |
623,53±29,15 |
5,06±0,15 |
1484,00±101,14 |
1,253±0,058 |
570 |
0,589±0,020 |
609,04±23,70 |
5,00±0,13 |
1419,21±78,67 |
1,224±0,047 |
600 |
0,55±0,026 |
689,84±24,69 |
5,38±0,12 |
1708,13±89,45 |
1,386±0,049 |
900 |
0,537±0,027 |
668,65±25,47 |
5,31±0,13 |
1633,74±93,92 |
1,344±0,051 |
1800 |
0,559±0,027 |
695,97±33,21 |
5,38±0,14 |
1739,35±128,25 |
1,398±0,067 |
3600 |
0,576±0,022 |
729,17±25,09 |
5,49±0,11 |
1851,38±92,81 |
1,466±0,050 |
Примечание: обозначения, как в табл. 18.
* Статистическая значимость достоверности различия с исходными данными при р<0,001; критерий Стьюдента.
Наблюдаемые эффекты пропранолола на морфологический профиль эритроцитов мы связываем с влиянием блокатора на проницаемость эритроцитарной мембраны для ионов и изменением транспортных ионных потоков в клетку. В работах Н.И. Агалаковой (1996) показано ингибирование пропранололом транспорта К+ в эритроциты. При этом показано, что поток К+ в эритроцит лягушек вносит Cl-зависимый транспорт. К-Сl-котранспорт обеспечивает
237
основную часть поступления К+ в клетку и участвует в регуляции внутриклеточного содержания ионов и объема клеток.
Таким образом, наблюдаемое нами резкое увеличение объема и потеря формы клеток, вероятно, связаны с ингибированием К-Сl- котранспорта. Указанный транспортный путь высокочувствителен к изменению температуры окружающей среды по сравнению с Na-K-АТФазой. В эритроцитах летних лягушек К-Сl-котранспорт будет первой мишенью для пропранолола. Увеличение объема клетки, площади поверхности и толщины в условиях действия пропранолола мы связываем с химической природой этого вещества и способностью его хорошо растворяться в липидах.
При связывании пропранолола с β-адренорецепторами происходит стабилизация мембраны за счет изменения транспорта ионов. В частности, пропранолол блокирует фосфорилирование G-белков цитоскелета, в результате чего поток кальция в клетку прекращается. Кроме того, учитывая, что кальциевые каналы эритроцитарных мембран являются рецепторуправляемыми (С.А. Сторожок и соавт., 1997), под влиянием пропранолола не происходит активация инозитол-1,4,5-трифосфата и поток кальция в клетку тормозится.
Реактивность эритроцитов крови лягушек в ответ на изменение состава среды при добавлении 0,27·10-3 ммоль/л пропранолола (неселективный блокатор β-адренорецепторов) отражена на-
рис. 39.
GΔTк |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
0,6 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
0,5 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
0,4 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
0,3 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
0,2 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
0,1 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
0 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
30 |
90 |
150 |
210 |
0,27 |
330 |
390 |
450 |
510 |
570 |
900 |
3600 |
c |
Рис. 39. Динамика клеточного ответа на блокаду мембранных β-адренорецепторов
238
Первая реакция эритроцитов отмечается через 90 с инкубации, в которую вовлекаются клетки с высокопроницаемой мембраной. По данным литературы (Н.И. Агалакова, 1996), показано ингибирование пропранололом транспорта К+ в эритроциты. К-Сl-котранспорт обеспечивает основную часть поступления К+ в эритроцит и участвует в регуляции внутриклеточного содержания ионов и объема клеток. Наблюдаемая реакционная способность эритроцитов на 90, 150 и 210 с связана с ингибицией К-Сl-котрнспорта. Начиная с 270 с и по 450 с наблюдается следующая волна вовлечения эритроцитов в ответ на воздействие пропранолола, что связано с химической природой этого вещества и способностью его растворяться в липидах биологических мембран. В течение этого временного интервала пропранолол массово проникает через плазмолемму, изменяя вязкоэластические свойства липидного бислоя и блокируя деятельность β-адренорецепторов. Кроме того, в липидном бислое пропранолол образует дополнительные кластеры проницаемости. Заключительная волна реактивности эритроцитов наблюдается на 3600 с инкубации и совпадает с включением функционально активных эритроцитов.
Учитывая резкое повышение коэффициента резервной поверхности через 20 с инкубации, мы не исключаем повышенной реакционной способности клеток на фармакокинетический агент. Через 30 с количество функционально неполноценных клеток в условиях действия пропранолола повышалось в 8 раз, через 60 с – в 9 раз. Следовательно, рост коэффициента резервной поверхности на фоне сокращения коэффициента формы клеток свидетельствует о развитии гемолитических процессов в системе. На 180 с количество форм с дестабилизированной мембраной составило 79,41% (в контроле – 23,45%). Наблюдаемое явление сохранялось до конца инкубации (рис. 40).
Таким образом, блокада β-адренорецепторов неспецифическим блокатором пропранололом в дозе 0,27·10-3 ммоль/л приводит к физиологической дисфункции эритроцитов.
239
% |
100 |
80 |
60 |
40 |
20 |
0 |
30 |
120 |
210 |
300 |
390 |
480 |
570 |
1800 |
с |
контроль опыт
Рис. 40. Динамика функционально неполноценных форм эритроцитов при воздействии пропранолола и гипотонии
С эволюционной точки зрения, возможно, наблюдаемая реакция закономерна, поскольку всё многообразие лекарственных препаратов вызывает изменение физиологических систем клеток, которые генетически сложились в ходе эволюции. В конкретном случае пропранолол изменяет протекание физиологических процессов по пути торможения К-Cl-котранспорта, что является главной причиной морфологической дисфункции в период весенне-летней вспышки гемопоэза.
240