_bdpi_TP_%d0%a3%d0%9c%d0%9a0

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

гель , мастицид, лазин, дифурол А, диофур, диоксидин, Дозы и способ применения. Фармакологическое действие препаратов.Показания. Лечение маститов у коров различной этиологии. Установление причин маститов и разработка мероприятий по профилактике заболеваний молочной железы при различных системах и формах содержания животных. Курация больных животных маститом.Демонстрация учебного кинофильма «Профилактика маститов у коров».

Контрольные вопросы:

1.Классификация маститов ?

2.Причины возникновения болезни ?

3.Лечение маститов ?

4.Техника выполнения блокад вымени по Д.Д. Логинову?

Занятие 27 . Лабораторные методы диагностики маститов у коров.

Цель занятия. Овладеть лабораторными методами диагностики маститов у коров.

Объекты исследования и оборудование: пробирки, пластмассовая пластинка с лунками, лейкоцитарные пробирки, центрифуга, пробочник № 5, хроматографическая бумага к фильтру Ф-1; 3%-ный раствор перекиси водорода на М/15 фосфатном буфере рН 7,2 (готовится в день проведения пробы), растворы бромтимолового синего, димастина, мастидина; индикаторные карточки, микропипетки, предметные и покровные стекла, микроскопы; бактериологические краски, питательные среды, суточная культура стафилококка (молочная ветка). Кроме того, необходимо иметь оборудование и реактивы для проведения анализа крови (определение эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, выведение лейкоцитарной формулы) и мочи (количество ее, цвет, консистенцию, наличие белка, сахара и другие показатели определяют по общепринятым методикам). Биохимический анализ сыворотки крови проводят в ветеринарной лаборатории, а затем используют эти данные при составлении рациона кормления больных маститом коров. Физико-химические приборы, тесты, приборы ПЭДМ ( стойловые приборы молока), лабораторные методы диагностики маститов.

Лабораторный анализ секрета молочной железы предусматривает определение цвета, консистенции, запаха, сгустков и хлопьев (проба отстаивания), щелочности (пробы с индикаторными карточками, бромтимоловым синим, мастидином и димастином), примеси лейкоцитов (лейкоцитарная проба), крови, а также проведение бактериологического исследования секрета. Кроме того, в секрете вымени можно выявить ферменты (каталаза, редуктаза), содержание лизоцима (мурамидазы) и др.

Определение примесей. Молоко для лабораторного исследования берут следующим образом. Первые 2—3 мл секрета из четвертей удаляют, а затем выдаивают молоко в пробирки, одинаковые по диаметру и цвету стекла, и на пластмассовую пластинку с углублениями (лунками). Порции секрета из отдельных четвертей сравнивают между собой по цвету и консистенции; при этом можно уловить примесь крови, хлопьев и сгустков. Для определения примесей

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

можно пропустить молоко через сеточку или марлю; примеси остаются на их поверхности. Пробы секрета в пробирке можно оставить в холодильнике на сутки. Молоко из здоровой четверти осадка не дает. Определение щелочности секрета. Бромтимоловая проба. Индикаторные карточки. Проба с димастином. Проба отстаивания.

Контрольные вопросы:

1.Проба с димастином ?

2.Бромтимоловая проба ?

3.Какие методы диагностики определения мастита ?

4.Бактериологическое исследование ?

Занятие 28. Бесплодие самцов самок при бруцеллезе.

Цель занятия. Освоение взятия крови у животных для исследования на бруцеллез.

Составление плана оздоровительных и профилактических мероприятий в хозяйствах, неблагополучных по бруцеллезу.

Основное оборудование и материалы. Пробирки с ватными пробками, резиновый шланг, бумага для этикеток, описей и сопроводительных документов. Штатив для пробирок. Стерилизатор, иглы для взятия крови. Ножницы, 3-5% раствор фенола, ящик для упаковки крови. Инструменты для фиксации животных. Животные – крупный рогатый скот, овцы, козы, лошади, свиньи. Бруцеллин ВИЭВ, сухая живая бруцеллезная вакцина из штамма №82. Наставления по применению указанных препаратов. Физраствор стерильный. Шприцы 2-5 граммовые, иглы к шприцам, пинцет, электроплитка, вата, 3% раствор борной кислоты, спирт. Стерильные флаконы для разведения сухой бруцеллезной вакцины. Щипцы для мечения животных, привитых бруцеллезной вакциной. Животные – телята (до года), овцы, козы.Инструкция о мероприятиях по профилактике и ликвидации бруцеллеза животных; наставления по применению сухой живой вакцины из штамма №82.

Краткие методические указания. Занятия проводят в клинике, лаборатории, учебном хозяйстве. Диагностика бесплодия.

Задание 1. Освоить технику взятия крови у сельскохозяйственных животных для исследования на бруцеллез.

Задание 2. Подготовьте кровь к отправке в лабораторию, и написать сопроводительные документы.

Задание 3. Изучите технику введения бруцеллезных антигенов различным сельскохозяйственным животным, методы оценки реакции.

При решении задач студенты работают с Ветеринарным законодательством

иинструкцией по бруцеллезу.

Контрольные вопросы:

1.Как происходит заражение животных?

2.Мероприятия по ликвидации болезни?

3.Методы диагностики ?

4.Клинические признаки ?

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

Занятие 29. Бесплодие и яловость.

Цель занятия. Диагностика бесплодия самок и понятие яловости. Обследование хозяйства для установления причин бесплодия. Овладение методами вагинального и ректального исследования коров (кобыл) на гинекологические заболевания (использование инструментов, приборов, аппаратов УЗИ и др.).

Объекты исследования и оборудование: животные, термометры, фонен-

доскопы, плессиметры и перкуссионные молотки, Краткие методические указания. Занятия проводят в клинике, лаборато-

рии, учебном хозяйстве. Приобретение навыков по диагностике и лечению больных самок (вагинальные и маточные введения лекарственных препаратов, методы новокаиновой, гормональной, оперативной и физиотерапии: УВЧ, лучи лазера и др.) при болезнях влагалища, матки, яйцеводов и яичников. Методы клинического и рефлексологического исследования племенных производителей. Освоение способов терапии племенных производителей при патологии половых органов. Методика определения экономического ущерба, причиняемого бесплодием и малоплодием животных (учет показателей воспроизводства стада.). Составление комплексного плана мероприятий по профилактике и ликвидации бесплодия в хозяйстве (на ферме) Акушерско-гинекологическая диспансеризация. Изучение музейных препаратов с гинекологической патологией.

Контрольные вопросы:

1.Методика определения экономического ущерба?

2.Дать определение бесплодию?

3.Дать определение яловости ?

4.Причины бесплодия ?

5.Старческое бесплодие ?

БИОТЕХНИКА РАЗМНОЖЕНИЯ

Занятие 1. Организация искуственного осеменения сельскохозяйственных животных

Цель занятия. Изучить размещение и оборудование государственных станций и пунктов (стационарных и передвижных) искусственного осеменения, филиалов, станций искусственного осеменения, станков для фиксации коров, овец, свиней, кобыл, необходимых инструментов для осеменения животных в полевых условиях.

Объекты исследования и оборудование: схемы и чертежи станций плем-

предприятйй, типовых пунктов и передвижных пунктов искусственного осеменения животных, чертежи, рисунки, макеты и натуральные станки для фиксации животных во время осеменения, сумка техника с инструментами для осеменения коров, телок и овец в полевых условиях отгонных пастбищ.

Краткие методические указания. Занятия проводят на станции, племпредприятйй, пункте искусственного осеменения, учебно-опытного хозяйства и кафедры. Преподаватель на кафедре знакомит студентов с организацией искусственного осеменения на станции, филиале и пункте искусственного осеменения,

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

с их устройством, оборудованием и условиями работы. Затем студенты вместе с преподавателями выезжают на станцию и пункт искусственного осеменения, где знакомятся с организацией там работы, ветеринарно-санитарным состоянием. На станции или племпредприятий студенты осматривают помещения для содержания производителей, лабораторно-технологический корпус, карантинное помещение для хранения спермы, стационарное помещение для. длительного хранения спермы, цех кормопроизводства, изолятор, ветеринарный пункт, помещения для административно-управленческого персонала и специалистов, культурно-бытовые учреждения. Студентов знакомят со штатным расписанием станции или племпредприятия, с оплатой труда, учетом и отчетностью, организацией кормления, содержания и использования производителей; способами подготовки приборов и инструментов, методами получения спермы, оценки ее качества, разбавления, фасования, хранения и транспортирования.При посещении животноводческих хозяйств студенты осматривают пункты искусственного осеменения коров и телок, знакомятся с организацией работы на них, плана, изучают учетно-отчетную документацию. На подпунктах, где проводят только осеменение кобыл привозной спермой с госплемстанций, осматривают помещения для хранения спермы, инструментов и подготовки посуды и приборов, манеж для осеменения.

Контрольные вопросы:

1.технологией осеменения ?

2.учет и отчетностью станции или племпредприятий ?

Занятие 2. Подготовка и обезораживание посуды и инструментов Цель занятия. Изучить методы обработки посуды и инструментов.

Объекты исследования и оборудование: стеклянная посуда, предметные и покровные стекла, палочки стеклянные, шприцы-катетеры, гиермоприемники, тазы эмалированные, кастрюля эмалированная на 3 5 л, ерши, щетки для рук, полотенца, марля, марлевые салфетки, «миртовые тампоны, бумага фильтровальная, доска с колышками, 1%-ный и 2—-3%-ный растворы натрия гидрокарбоната (двууглекислой соды), дистиллированная вода, тампоны, пропитанные 96%-ным спиртом; 0,9%-ный раствор натрия хлорида, раствор хромовой смеси.

Краткие методические указания. Ознакомление с инструментами приборами для искусственного осеменения коров, овец, свиней, кобыл, крольчих, птиц. Подготовка рабочего места, стерилизация и обработка инструментов и материалов. Студенты самостоятельно проводят обработку посуды. Правила работа с автоклавом. Приготовление растворов, фильтров, тампонов и марлевых салфеток.

Контрольные вопросы:

1.Стерилизация кипячением ?

2.Стерилизация в автоклаве ?

3.Ультрафиолетовое облучение

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

Занятие 3. Устройство вагин и методы получения спермы Цель занятия. Изучить устройство и правила сборки искусственных ва-

гин, ознакомиться с методикой получения спермы от быка, барана, хряка и жеребца.

Объекты исследования и оборудование: разобранные искусственные ва-

гины быка, барана, хряка, жеребца, спермоприемники и утеплители к ним, штативы для спермоприемников, 2—3%-ный раствор двууглекислой соды, ерши, капроновые и поролоновые протирки, ванна или тазы, горячая вода, подставки для вагин и инструментов, корнцанги, тампоны ватные, пропитанные 96%-ным спиртом, сухие стерильные тампоны и марлевые салфетки, пинцеты разные, 1 %-ный раствор натрия гидрокарбоната или 0,9%-ный раствор натрия хлорида, термометры, кружки эмалированные или алюминиевые на 500 и 250 мл, воронки стеклянные, вазелин стерильный, сливные чашки, водяная баня, палочки пластмассовые или стеклянные, полотенца, компрессор для нагнетания воздуха, резиновые баллоны (спринцовки), шары Ричардсона, стерилизатор для вагин, шкаф-термостат для вагин, станки для получения спермы от быка и барана, чучело свиньи, случная шлейка для фиксации кобылы.

Краткие методические указания. Занятия проводят в лаборатории кафедры и учебном пункте. Студентов распределяют на небольшие группы (по 5 человек) и обеспечивают необходимыми приборами, материалами и оборудованием. Вначале изучают детали искусственных вагин, затем преподаватель демонстрирует правила сборки вагин. Каждый студент собирает искусственную вагину. После этого получают сперму от производителей.

Искусственная вагина состоит из наружного упругого резинового цилиндра, внутренней резиновой камеры, вставленной в цилиндр и закрепленной на нем с обеих концов тремя резиновыми кольцами. На середине цилиндра имеется воронкообразный патрубок с отверстием для наливания воды. В отверстие патрубка вставляют эбонитовый кран, через который нагнетают воздух, чтобы создать нужное давление. На одном конце закрепляют резиновым держателем стеклянный спермоприемник.

Контрольные вопросы:

1.Виды вагин для быка?

2.Виды вагин для барана ?

3.Виды вагин для жеребца?

4.Виды вагин для хряка ?

5.Требование к вагинам ?

Занятие 4. Влияние на спермиев физических и химических факторов Цель занятия: изучить действие на спермиев отдельных факторов, вызы-

вающих их гибель.

Объекты исследования и оборудование: сперма, микроскопы, предмет-

ные и покровные стекла, глазные пипетки или стеклянные палочки, градуированная пипетка на 1 мл, обогревательный столик, лед в чашке, горячая вода, ча-

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

совые стекла, 2,9%-ный раствор натрия лимоннокислого, 0,9%-ный и 3%-ный раствор натрия хлорида; дистиллированная вода, 1%-ный раствор лизола или креолина, раствор калия перманганата 1:3000, 2%-ный раствор формалина, 96%-ный спирт, настойка йода, вата, марлевые салфетки, фильтровальная бумага, полотенца.

Краткие методические указания. Занятия проводят в лаборатории кафедры или учебном пункте. Студентов (по 2 человека) обеспечивают необходимыми материалами и оборудованием.Преподаватель объясняет методику изучения действия на спермиев высокой и низкой температуры, растворов с различным осмотическим давлением и антисептиков. Затем студенты изучают действие на спермиев указанных факторов.

Действие высокой и низкой температуры. При температурах, близких к температуре тела животных (37— 39°С), спермин двигаются наиболее активно, но быстро погибают. Температуры выше 39°С вызывают быструю остановку движения спермиев и их гибель из-за коагуляции (свертывания) белка. При температурах ниже, чем температура тела животных, движение спермиев замедляется. При постепенном охлаждении спермы до температуры около 0°С движение спермиев прекращается, и они переходят в состояние анабиоза.При подогревании спермы до температуры 37— 39°С подвижность их восстанавливается. Резкое охлаждение спермы вызывает температурный шок — гибель.

Контрольные вопросы:

1.Воздействие низких температур?

2.Воздействие высоких температур ?

3.Воздействие антисептиков ?

Лабораторные занятия

МЕТОДЫ ОЦЕНКИ КАЧЕСТВА СПЕРМЫ

Занятие 5. Общая или визуальная, оценка качества спермы Цель занятия: Изучить наиболее распространенные методы оценки каче-

ства спермы.

Объекты исследования и оборудование: спермоприемники со спермой быка, барана, градуированные мензурки с профильтрованной спермой хряка и жеребца, стерильные пипетки, смесители.

Краткие методические указания. Занятия проводят в лаборатории кафедры или в учебном пункте. Каждого студента обеспечивают оборудованием, инструментами и материалами, указанными в соответствующих разделах данной темы.Преподаватель объясняет студентам наиболее принятые методы оценки качества спермы, а затем демонстрирует правила работы г фотоэлектроколориметром. После этого студенты самостоятельно оце нивают качество спермы быка, барана, хряка и жеребца.При визуальной оценке качества спермы определяют ее объем, цвет, запах и консистенцию.Объем спермы определяют сразу после ее получения от производителей.

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

Сперму быка и барана набирают в теплые градуированные пипетки на 2 или 10 мл. Объем спермы быка можно определить в стерильной мензурке или специальном смесителе по градуировке на нем. Объем спермы хряка уточняют после фильтрования по делениям мензурки. Объем спермы жеребца определяют в градуированной мензурке после процеживания ее через 2—3 слоя стерильной марли

Объем спермы производителей сельскохозяйственных животных.

Сперму осматривают при хорошем освещении. У быка и барана нормальная сперма белого с желтоватым оттенком, у хряка и жеребца — белая с сероватым оттенком. Нормальная сперма производителя обычно без запаха. Сперма барана может иметь запах жиропота, а сперма быка — запах молока.

Контрольные вопросы:

1.Визуальная оценка спермы?

2.Какой объем спермы у производителей?

3.Причины выбраковки спермы ?

Занятие 6. Оценка качества спермы по густоте и подвижности спермиев

Цель занятия: Овладеть методикой оценки качества спермы по густоте и подвижности спермиев.

Объекты исследования и оборудование: спермоприемники, флаконы,

мензурки со спермой быка, барана, хряка и жеребца, столик Морозова, электрообогревательные столики, предметные и покровные стекла, стек- лянные-палочки или пипетки, вата, марлевые салфетки, сливная чашка.Густоту и подвижность (активность) спермиев опредиляют при помощи микроскопа. Сперму считают густой, когда под микроскопом все поле зрения заполнено спермиями так, что между ними почти не видно промежутков. В густой сперме обычно трудно различить движение отдельных спермиев.

Средняя сперма — в поле зрения микроскопа заметны промежутки между спермиями; хорошо различимо движение отдельных спермиев.

Редкая сперма — спермин находятся в поле зрения микроскопа так, что между ними имеются большие промежутки. Когда в исследуемой сперме не находят спермиев, то такую сперму оценивают буквой А (сокращенное обозначение аспермия). Различают также олиг оспермию, когда в сперме обнаруживаются лишь единичные спермин. Бараны, как правило, выделяют только густую сперму (более 2 млрд. в 1 мл спермы), быки — густую и среднюю (0,5—1 млрд. в 1 мл). У хряков и жеребцов содержится в густой сперме более 0,2 млрд., в средней — 0,11—0,2, редкой — менее 0,1 млрд. спермиев в 1 мл спермы.

Разрешается использовать сперму (до разбавления) : барана густую; быка, хряка и жеребца густую и средней густоты. Наряду с оценкой спермы по густоте определяют под микроскопом процент спермиев с прямолинейнопоступательным движением; сперму оценивают глазомерно по десятибалльной

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

шкале. Когда все спермии обладают прямолинейно-поступательным движением, сперму оценивают в 10 баллов, при 90% с прямолинейным движением — в 9 баллов, при 80% — 8 баллов и т. д.

Сперму с манежным движением оценивают буквой М, а с колебательным

— буквой К. Неподвижных спермиев обозначают буквой Н (неподвижность). Если менее 10% спермиев имеют прямолинейно-поступательное движение, то такую сперму обозначают буквой Е (единичные). Окончательную оценку спермы производят по двум показателям: по густоте и подвижности. Например: Г 10 — сперма густая, около 100% спермиев с прямо-шнейно- поступательным движением; С-9 — сперма средней густоты, около 90% спермиев имеют прямолинейно-поступательное движение; Р-7 — сперма редкая, около 70% спермиев с прямолинейно-поступательным движением. Для разбавления и хранения допускают сперму барана с оценкой не ниже Г-9, быка и хряка — Г и С не ниже 8 баллов, жеребца — Г и С не ниже 6 баллов.

Определение процента живых и мертвых спермиев методом дифференциальной окраски

Объекты исследования и оборудование: свежеполученная сперма, обез-

жиренные предметные и покровные шлифованные стекла, стеклянная палочка или глазная пипетка, вата, 5%-ный водный эозин, краска конго-рот, микроскоп.

При смешивании спермы с водным раствором эозина живые спермии с прямолинейно-поступательным движением не окрашиваются, а мертвые и ослабленные (с колебательным движением) имеют повышенную проницаемость для красителя и вследствие этого окрашиваются. Для определения процента живых и мертвых спермиев наносят на край обезжиренного предметного стекла пипеткой или стеклянной палочкой небольшую каплю спермы и 2—3 капли 5%-ного водного эозина. Расгвор эозина готовят на 3%-ном растворе цитрата натрия. Капли быстро перемешивают стеклянной палочкой и из смеси делают тонкий мазок на предметном стекле. Мазок быстро высыхает на воздухе. Затем его просматривают под микроскопом при увеличении в 400—600 раз. Процент живых и мертвых спермиев в сохраняемой сперме жеребца определяют по такой же методике, но вместо эозиновой краски для окрашивания мертвых спермиев применяют краску конго-рот. На 100 мл 7%-ного раствора глюкозы берут 1 г краски.

Определение интенсивности дыхания спермиев по обесцвечиванию метиленовой синьки

Объекты исследования и оборудование: свежеполученная сперма, рас-

твор метиленовой синьки в концентрации 0,01%, приготовленной на изотоническом (0,9%) растворе натрия хлорида, капиллярные стеклянные трубочки с диаметром канала 0,8—1 мл и длиной 6—8 см, песочные часы, предметные стекла, глазные пипетки, лист белой бумаги.

Метод основан на использовании спермиями кислорода синьки, добавленной в сперму, которая в результате этого обесцвечивается. На чистое предметное стекло из глазной пипетки наносят каплю свежеполученной спермы

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

набирают в нее смесь так, чтобы столбик был длиной около 2 см. Затем кладут

проводят при температуре 20—22°С.

Оценка качества спермы по времени обесцвечивания метиленовой синьки (мин)

Чем интенсивнее поглощается кислород, тем скорее наступает обесцвечивание, тем выше выживаемость и оплодотворяющая способность спермиев.

Определение концентрации спермиев в счетной камере Объекты исследования и оборудование: счетная камера Горяева, смеси-

тели (меланжеры) эритроцитные и лейкоцитные, покровные ( стекла шлифованные, дистиллированная вода, спирт 96%-ный, эфир, 3%-ный раствор натрия хлорида, резиновая груша или шары Ричардсона, марлевые салфетки, спиртовые тампоны, вата, счетчик для форменных элементов крови.Для определения концентрации спермиев используют в основном счетную камеру Горяева. Она состоит из толстого продолговатого предметного стекла, на котором имеются три площадки, разделенные поперечными прорезями. На каждой из средних площадок нанесены две квадратные сетки площадью по 9 мм2. Каждая сетка имеет по 225 больших квадратов, из которых 25 раз.

Определение процентного соотношения нормальных и патологических спермиев

Объекты исследования и оборудование: сперма, предметные стекла,

спиртовая горелка, растворы фуксина, эозина или метиленовой синьки, 0,9% - ный раствор натрия хлорида; фильтровальная бумага, пипетки, дистиллированная вода, микроскоп.

Сперму барана разбавляют 0,9%-ным раствором натрия хлорида в 20—30 раз, быка — в 10—15 раз, густую сперму хряка и жеребца — в 2—3 раза. Если концентрация в сперме хряка и жеребца 100—200 млн. спермиев в 1 мл и меньше, то ее не разбавляют. На предметное стекло наносят каплю спермы и делают тонкий мазок. Его сушат, фиксируют 96%-ным спиртом 1—2 мин и окрашивают 1—2%-ным раствором фуксина, эозина или 0,1%-ным раствором метиленовой синьки. На мазок кладут полоску фильтровальной бумаги, чтобы не- растворив-шиеся кусочки краски не осели на стекло и не мешали подсчету. Раствор краски наливают на бумагу и заполняют им всю поверхность стекла. Краску на стекле смывают водой и высушивают мазок на воздухе. Просохший мазок просматривают под микроскопом при увеличении в 400—600 раз и подсчитывают в нескольких полях зрения не менее 200 спермиев. В каждом поле зрения считают нормальные и патологические спермии, а затем вычисляют процент их содержания.К числу патологических спермиев относят: гигантских и карликовых, с деформацией головки, с двумя головками, с надломом шейки, изолированные головки, с искривленным или закрученным хвостом, с двумя

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

хвостами, утолщением хвоста и пр.Сперма барана допускается к использованию для искусственного осеменения, если в ней содержится не более 14%, в сперме быка — не более 18, хряка — не более 20 и жеребца — не более 25% патологических спермиев. Высокий процент патологических спермиев в сперме снижает ее оплодотворяющую способность и может быть одной из причин бесплодия производителей.

Контрольные вопросы:

1.Оценка качества спермы по густоте ?

2.Определение абсолютной выживаемости спермиев ?

3.Определение процентного соотношения нормальных и патологических спермиев ?

4.Определение процента живых и мертвых спермиев ?

Занятие 7. Разбавление спермы Цель занятия: Изучить состав основных синтетических сред для разбав-

ления спермы, методику их приготовления, технику и правила разбавления спермы.

Объекты исследования и оборудование: свежеполученная сперма быка,

барана, хряка, жеребца;' дистиллированная вода, натрий лимоннокислый трехзамещенный пятиводный; глюкоза, лактоза, фруктоза, раффиноза пятиводная, калий фосфорнокислый однозамещенный, хелатон (трилон Б), натрия гидрокарбонат, магний сернокислый, аммоний сернокислый, лимонная кислота, куриные яйца, свежее молоко коровы, пенициллин, стрептомицин, белый стрептоцид, спермо-сан-3, фарфоровая ступка с пестиком, стерильные марлевые салфетки, натрия хлорид, вакуум-наполнитель; мензурки или мерные цилиндры на 50, 100, 250 и 500 мл, колбы на 100, 250 и 500 мл, воронки, спермоприемники, стерильные флаконы из-под пенициллина, резиновые пробки к ним, баночки на 100 мл, фильтровальная бумага, пинцеты, скальпели, спиртовые тампоны, аналитические или аптечные весы с разновесами, часовые стекла, штативы для спермоприемников, смесителей и флаконов, водяная баня, термометры, микроскопы, обогревательный столик или термостат, предметные и покровные стекла, пипетки, щетки для рук.

Краткие методические указания. Занятия проводят в лаборатории кафедры или учебном пункте. Студентов (по 2 человека за одним столом) обеспечивают указанными выше реактивами, материалами и оборудованием. Преподаватель знакомит студентов с компонентами, входящими в состав синтетических сред, объясняет методику их приготовления, технику и правила разбавления спермы. Затем студенты самостоятельно готовят основные синтетические среды и разбавляют сперму быка, барана, хряка, жеребца. Для разбавления спермы применяют различные синтетические и биологические среды.

Чаще используют желточные среды; состав их зависит от вида животного и температурного режима хранения спермы. Цитрат натрия также участвует в заключительной части дыхательного процесса спермиев.Желток куриного яй-

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

ца содержит 7% неокисленного лецитина, который предохраняет спермиев от температурного шока, способствует сохранению оболочки спермиев. Лецитин также используется как питательное вещество, что предохраняет расходование липоидов спермиев. Желток должен быть ярко-оранжевого цвета.

Бактериостатические вещества — пенициллин, стрептомицин и белый стрептоцид — задерживают развитие микробов, попавших в сперму. В последнее время начали применять с этой целью специальный препарат спермосан-3. Все медицинские препараты должны отвечать требованиям фармакопеи IX и быть безвредными для спермиев. Хранить их необходимо в герметически закрытой темной посуде в сухом темном месте. Для приготовления сред применяют дистиллированную или би-дистиллированную воду.

Для приготовления молочных сред используют свежее молоко здоровой коровы, а для спермы жеребца — молоко кобылы. Можно также применить сухое полужирное молоко.

В среды вводят глицерин. Его используют в синтетических средах при замораживании спермы. В присутствии глицерина замерзание воды в синтетической среде происходит без образования крупных кристаллов, которые могут повреждать спермиев.

Состав сред для разбавления спермы различных видов сельскохозяй-

ственных животных. Для разбавления и хранения спермы быка применяются следующие синтетические среды. Среды для разбавления и кратковременного хранения спермы быка при 2—5°0. 1. Среда глюкозо-цитрат-но-желточная (ГОСТ 14746—69): глюкоза медицинская безводная — 3 г, натрий лимоннокислый трехзамещенный пятиводный—1,4 г, желток куриного яйца — 20 мл, спермосан-3 — 75—90 тыс. ед., вода дистиллированная — 100 мл. Молочножелточная среда: свежее молоко-100 мл, желток куриных яиц — 20 мл. Среда для разбавления и замораживания спермы быка в форме гранул: лактоза — 11,5 г, желток куриных яиц — 20 мл, глицерин — 5 мл, спермосан-3 — 50 тыс. ед., вода дистиллированная — 100 мл. Среда лактозо-фруктозо-раффинозо- магниево-глицерино-желточная (ЛФРМГЖ) для разбавления и замораживания спермы быка в полипропиленовых соломинках:

Контрольные вопросы:

1.Основные компоненты сред ?

2.Влияние лицетина ?

3.Требования к разбавителям ?

Занятие 8 . Хранение спермы Цель занятия: Ознакомиться с оборудованием для хранения и транспор-

тирования спермы быка, барана, хряка, жеребца.

Объекты исследования и оборудование: свежеполученная сперма быка,

барана, хряка, жеребца; синтетические среды для разбавления спермы; одноразовые стеклянные, полиэтиленовые ампулы и пробирки; флаконы из-под антибиотиков, пробки к ним, вата, поролоновые амортизаторы, полиэтиленовые

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

мешочки, электрохолодильник, термосы различных конструкций, сосуды Дьюара, лед, бытовые сумки-холодильники, стеклянные колбы, микроскоп, предметные и покровные стекла, стеклянные пипетки или палочки, резиновые кольца, стеклянные банки с притертыми крышками на 50—100 мл, марля, пергаментная бумага или целлофан, резиновые перчатки, защитные очки, фторопластовые пластинки, держатель пластины, контейнеры для сбора и хранения гранул в сосудах с жидким азотом, лопатки для съема гранул с пластины, воронки для ссыпания гранул, корнцанги, шприцы на 25—50 мл или градуированные пипетки для разлива спермы в лунки фторопластовой пластины, пинцеты, специальное устройство для разбавления спермы, тонкостенная полимерная трубка, автомат ПРЖ, алюминиевые трубы диаметром 40 мм, устройство для замораживания спермы, полипропиленовые трубочки, анаэростат, вакуумный насос, медное сито (корзина), стаканчики для пайетт.

Краткие методические указания. Занятия проводят в лаборатории кафедры. Студентов (по 2 человека за одним столом) обеспечивают необходимыми материалами и оборудованием. Преподаватель знакомит студентов с оборудованием для хранения спермы, с методами кратковременного хранения.

Контрольные вопросы:

1.Температурный режим рпи длительном хранении спермы. ?

2.Методы кратковременного хранения.?

3.Устройство сосуда Дьюара ?

Занятие 9. Осеменение коров Цель занятия: Освоить практические приемы и навыки существующих

способов искусственного осеменения коров.

Объекты исследования и оборудование: микроскопы, предметные и по-

кровные стекла, термостаты, обогревательные столики, стеклянные палочки, термос со спермой, анатомические пинцеты, металлические штативы для инструментов, стеклянные шприцы-катетеры, влагалищные зеркала, комплекты для маноцервикального осеменения коров с ректальной фиксацией шейки матки, три баночки с притертой пробкой для 1%-ного раствора натрия бикарбоната или 2,9%-ного раствора натрия лимоннокислого и одна для 70%-ного спиртаректификата, ватные тампоны, пропитанные спиртом (96%), стерильные марлевые салфетки, спиртовки, полотенце, вата, сливные чашки, электроплитки, кружка Эсмарха, теплая вода, мыло, ведра; коровы в охоте.

Краткие методические указания. Занятия проводятся в учебно-опытном пункте кафедры или учебном хозяйстве. Группу студентов распределяют на подгруппы (по 4 человека). Выделяют по числу подгрупп рабочие места со всем необходимым оборудованием для осеменения коров. Освоение способов искусственного осеменения коров (телок), овец, свиней, кобыл, птиц ( на боенском материале и тренажерах и живых объектах). Коров и телоквизоцервикально с использованием шприца-катетера и влагалищного зеркала, с ректальной фиксацией шейки матки, мано-цервикальный.Освоение техники искусст-

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

венного осеменения, выбора времени и кратности осеменения самок. Знакомство с работой пунктов искусственного осеменения животных.

Контрольные вопросы:

1.Влагалищный способ осеменения. ?

2.Выбор самки в охоте?

3.Мано-цервикальный способ?

4.Визо-цервикальный способ

5.Ректо-цервикальный способ

Занятие 10. Осеменение овец и коз Цель занятия: Освоить практические приемы и навыки существующих

способов искусственного осеменения .

Объекты исследования и оборудование: микроскопы, предметные и по-

кровные стекла, комплект искусственных вагин для барана, термос с сохраненной спермой, влагалищные зеркала для овец, микрошприцы с дозирующим приспособлением, шприцы-полуавтоматы, микроскопы, предметные и покровные стекла, стеклянные палочки, пинцеты, ножницы, штативы для инструментов, баночки с теплым 1%-ным раствором натрия бикарбоната, 70%-ным спиртом, марлевые салфетки, ватные тампоны и тампоны, пропитанные 70%-ным и 96%-ным спиртом, тампониицы, сливные чашки, вата белая, полотенца, спиртовки, электроплитки, эмалированные кружки, тазы, теплая вода, мыло, ведра, переносные станки, станок для осеменения овец.

Краткие методические указания. Занятия проводят в учебном пункте кафедры или учебном хозяйстве. Группу студентов распределяют на подгруппы (по 4 человека) и организуют рабочие места со всем необходимым оборудованием. Для каждого студента определяют определенную последовательность проведения работы с тем, чтобы были отработаны все приемы. Внимание студентов обращают на значение правильной подготовки маток, производителей, баранов-пробников к осеменению, режим эксплуатации производителей, эффективность использования различных пробников для выявления половой охоты и методику их применения, время и кратность введения спермы, значение сжатых сроков осеменения и получения максимальной оплодотворяе-мости маток в одну охоту, методику применения баранов-пробников для вольного спаривания овцематок, учет работы и отчетность пункта.

Время и кратность осеменения. Овцам вводят сперму в шейку матки (влагалищный тип естественного осеменения). Применяют в основном свежую неразбавленную сперму с активностью 8—10 баллов при концентрации спермиев не менее 2 млрд. в 1 мл; доза — 0,05 мл. Свеже-полученная сперма очень чувствительна к температурным колебаниям (температурный шок), поэтому ею осеменяют овец только в помещении с температурой 18—25°С. Все инструменты, соприкасающиеся со спермой, должны быть теплыми. Разбавленную (в 2— 3 раза) и охлажденную сперму до температуры 2—4°С используют в течение 24 ч в дозе 0,1—0,15 мл при содержании не менее 80 млн. активных спермиев. Чем

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

меньше срок хранения спермы барана, тем выше оплодотворяемость овцематок. Овец, выявленных в охоте рано утром, осеменяют немедленно и затем через 24 ч. При этом двукратно осеменяют только тех маток, у которых охота еще продолжается. При задержке первого осеменения всего лишь на 3—4 ч эффективность двукратного осеменения резко снижается и значительно возрастает бесплодие. Лучшие результаты достигаются при двукратном осеменении с 8—12- часовым интервалом. Козы в течение сезона осеменения проявляют охоту неравномерно. В дни массового прихода в охоту их отбирают дважды в сутки: утром и вечером. осеменения, универсальный зонд УЗК-5, поролоновый термос, дистиллированная вода, 2—3%-ный раствор двууглекислой соды, стерилизатор, пинцет, синтетическая среда для разбавления спермы, 0,9%-ный раствор натрия хлорида, сушильный шкаф, водяная баня, стерильные полиэтиленовые чехлы для катетеров, марлевые салфетки.

Контрольные вопросы:

1.Организация выбора самок в охоте?

2.Способы осеменения овец?

3.Способы осеменения коз ?

Занятие 11. Осеменение свиней Цель занятия: Освоить практические приемы и навыки существующих

способов искусственного осеменения у свиней.

Объекты исследования и оборудование: микроскопы, предметные и по-

кровные стекла, термостаты, обогревательные столики, стеклянные палочки, термос со спермой, анатомические пинцеты, металлические штативы для инструментов, стеклянные шприцы-катетеры, влагалищные зеркала, комплекты для маноцервикального осеменения коров с ректальной фиксацией шейки матки, три баночки с притертой пробкой для 1%-ного раствора натрия бикарбоната или 2,9%-ного раствора натрия лимоннокислого и одна для 70%-ного спиртаректификата, ватные тампоны, пропитанные спиртом (96%), стерильные марлевые салфетки, спиртовки, полотенце, вата, сливные чашки, электроплитки, кружка Эсмарха, теплая вода, мыло, приборы для осеменения свиней.

Краткие методические указания: занятия проводят в учебном пункте кафедры или в хозяйстве. Студентов распределяют на группы (по 4 человека) и обеспечивают материалами и инструментами, устанавливают порядок последовательного выполнения студентами технических приемов осеменения.Отобранных свиноматок в охоте переводят в манеж для осеменения в индивидуальные станки. На свиноводческих комплексах для ежедневного осеменения 50 свиноматок требуется проводить проверку на охоту 500 животных. Для этого поголовья необходимо иметь 6 хряков-пробников. Однако в целях сохранения половой активности хряков-пробников используют через два дня на третий. Поэтому для указанного поголовья нужно иметь три группы по 6 хря- ков-пробников, т. е. всего 18 голов. При сезонном осеменении рекомендуется на 150 свиноматок иметь одного хряка-пробника.Хряков-пробников использу-

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

ют с 8—9-месячного возраста.В промышленных хозяйствах молодых свинок рекомендуют осеменять первый раз в возрасте 9—10 мес и с живой массой не менее 110 кг, а свиноматок (проверяемых) в племенных хозяйствах — в возрасте 10—11 мес с живой массой не менее 130 кг. Осеменение взрослых свиноматок проводят обычно после отъема поросят. Если свиноматки имеют заводскую упитанность, допускается осеменять их в подсосный период. Взрослых животных осеменяют через 24 ч, а - молодых — через 30 ч от начала охоты. Если охоту выявляют 2 раза в день (утром и вечером), то свиноматок, у которых охота установлена утром, осеменяют вечером того же дня. При выявлении охоты вечером маток осеменяют утром следующего дня. Осеменение повторяют через 12 ч после первого осеменения. При однократном выявлении половой охоты свиноматок осеменяют двукратно: сразу после выявления охоты и через 24 ч

свиноматок содержат до конца охоты в индивидуальных станках или выдерживают в течение 1—2 сут в станках, в которых их осеменяли, так как при переводе в общие станки животные с еще не законченной охотой прыгают друг на друга и введенная им сперма может вытечь наружу.

Использованные приборы и инструменты после осеменения промывают вначале холодной, а затем горячей водой, потом в теплом растворе соды, ополаскивают водопроводной и дистиллированной водой и обеззараживают. За всеми осемененными свиноматками необходимо вести тщательное наблюдение, подпуская к ним с 10-го по 30-й день хряков-пробников, что позволяет выявить все возможные случаи повторной охоты и своевременно таких животных осеменить.

Контрольные вопросы:

1.Способы осеменения свиней ?

2.Определение дозы спермы?

3. С какого возраста осеменяют свиней ?

Занятие 12. Осеменение кобыл Цель занятия. Освоить технику искусственного осеменения кобыл.

Объекты исследования и оборудование: кобылы в охоте, свеже-

полученная неразбавленная и разбавленная сперма; станок для фиксации, случная шлейка; микроскоп, предметные и покровные стекла, обогревательный столик или термостат, стеклянные палочки или глазные пипетки, стеклянный шприц на 30—40 мл; эбонитовый катетер, катетер конструкции Иванова, 70%- ный спирт, кипяченая вода, среды для разбавления спермы, спиртовые тампоны, стерильные ватные тампоны.

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

Краткие методические указания. Занятия проводят в учебном пункте. Студентов распределяют на подгруппы (по 3—4 человека) и дают конкретные задания. Сперва проводят диагностику половой охоты при помощи жеребцапробника. Затем кобыл в охоте заводят в станок, производят ректальный контроль состояния яичников с целью определения стадий созревания фолликула, обрабатывают наружные половые органы, готовят инструменты, определяют качество спермы и осеменяют кобыл. С целью освоения всех приемов осеменения кобыл студенты меняются своими обязанностями.

Первое осеменение кобыл проводят на второй день (вечером) и повторяют до отбоя через 48 ч, а при наличии ярко выраженной охоты — через 24—36 ч. Если сочетают пробу кобыл на охоту жеребцом-пробником с ректальным контролем овуляции, то первое осеменение проводят в третью, а еще лучше в четвертую стадию фолликула. Через 24 ч вновь проводят ректальное исследование, и если овуляция не наступила, то кобыл осеменяют повторно.

Для осеменения кобыл используют сперму с активностью спермиев не ниже 5 баллов, для этого ее исследуют под микроскопом с применением обогревательного столика или в термостате. Затем сперму нагревают при комнатной температуре в течение 30 мин и используют для осеменения кобыл немедленно. Замороженную сперму в алюминиевых пакетах достают из жидкого азота (два пакета по 13 мл), быстро переносят в водяную баню при 40°С на минуту, затем насухо протирают чистой марлевой салфеткой, открывают один конец и набирают содержимое в шприц. Обеззараженный резиновый катетер вводят рукой во влагалище кобылы и узкий его конец направляют в канал шейки матки на глубину 8—10 см. К катетеру присоединяют шприц со спермой и вводят ее в матку в объеме 25—30 мл. Кобылам тяжеловозных пород и недавно жеребившимся сперму вводят в объеме 35—40 мл. Минимальная доза спермы для осеменения кобыл 20 мл. В дозе спермы должно быть 300—400 млн. активных спермиев. После осеменения катетер вытирают сухим тампоном и обеззараживают спиртовым тампоном. Шприц наполняют спермой и производят осеменение следующей кобылы, кобыл исследуют на беременность и бесплодие ректальным методом.

Контрольные вопросы:

1.Способы осеменения кобыл?

2.Время осеменения кобыл?

3.Определение дозы для осеменения ?

Занятие 13.Осеменение сельскохозяйственных птиц Цель занятия. Ознакомиться с технологией получения спермы от самцов

сельскохозяйственных птиц, составом разбавителей и способами сохранения спермы, технологией искусственного осеменения самок, организацией и проведением искусственного осеменения птиц.

Объекты исследования и оборудование: петухи, куры, индюки,

индейки, гусаки, гусыни, стерильные салфетки и пробирки (спермоприемники), стеклянные палочки, микроскоп, предметные и покровные стекла, станок для фиксации индейки с сеткой, электрический спермо-собиратель, флаконы из-под антибиотиков с пробками, свежеполучен-ная сперма, шприцы-

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

коза), натрий лимоннокислый, вода дистиллированная.

Краткие методические указания. Занятия проводят в лаборатории кафед-

и гусынь. Далее преподаватель знакомит студентов с организацией искусственного осеменения птицы.

Получение спермы. Перед получением спермы от петуха клоаку освобождают от остатков каловых масс и протирают отверстие стерильной марлевой салфеткой. Один человек ставит петуха на стол, левой рукой придерживает его в области груди. Одновременно ладонью правой руки массирует всю спину петуха, от последних шейных позвонков до корня хвоста. Массаж производят 3— 4 раза в течение нескольких секунд до тех пор, пока петух не начнет реагировать на это подниманием хвоста. После этого левой рукой фиксируют конечности петуха и берут его подмышку. Правой рукой производят легкий нажим в каудальной части абдоминальной области тела петуха, что приводит к выпячиванию клоаки. Это приводит к эрекции копуля-ционного органа (бугорка) и выделению спермы.

Сперму оценивают по общепринятой методике; объем ее у петуха 0,2—0,5 мл, концентрация спермиев 2— 3 млрд. в 1 мл. Сперму от петухов получают через день. Для получения спермы от индюков используют специальный станок, в котором фиксируют индейку и накрывают ее сеткой. Подпускают самца и во время спаривания массируют мягкую часть живота. Через 30— 40 с происходит выделение спермы, которую собирают в теплый стерильный спермоприемник. Сперму получают 2 раза в неделю. Качество ее оценивают по общепринятой методике. Индюки выделяют 0,25—0,4 мл спермы с концентрацией спермиев 2—3 млрд. в 1 мл. Сперму у гусаков получают так же, как у индюков. Качество спермы определяют по общепринятой методике. Гусаки выделяют 0,1 —1,3 мл спермы с концентрацией спермиев 0,3—0,9 млрд. в 1 мл. Для искусственного осеменения используют густую и среднюю сперму с активностью спермиев не ниже 7 баллов.

Контрольные вопросы:

1.Методы осеменения птиц?

2.Дозы для осеменения ?

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

Глосарий

А

Аборт–(Abortus)–этопрерывание беременности с последующим полным или частичным рассасыванием зародыша либо с изгнанием из полвых органов мертвого (выкидыша) или незрелого плода (недоноска).

Абсцессы вымени, abscessus uberis (абсцесс, лат. uber, eris вымя) — оди-

ночные или множественные гнойники, вызванные гноеродными бактериями. А. в. — разновидность мастита.

Агалактия – полное прекращение молокообразования в результате патологического процесса в молочной железе.

Агенезия, agenesia, ae, f (гр. а- отрицание, genesis развитие, рождение, происхождение), уродство плода — врожденное отсутствие или недоразвитие органа или части тела.

Агнатия, agnatia, ae, f (от гр. a- + gnathos челюсть) — врожденное отсутствие нижней челюсти. А.- одна из разновидностей агенезии.

Адаптация, adaptatio, onis, f (лат. приспособление) — приспособление организма, органов чувств к окружающим условиям, напр. А. глаза (сетчатки).

Адаптация физиологическая, adaptatio physiologica (адаптация, лат. physiologicus нормальный). Вследствие А. ф. повышается устойчивость организма к низкой и высокой температуре среды, нек-рым ядам, недостатку кислорода, воды и освещения. В результате длительности и многократности внешних воздействий А. ф. может стать более или менее стойкой. Возврат организма к исходному состоянию наз. дезадаптацией.

Акиноспермия – неподвижность живых спермиев вызванная охлаждением эякулята во время его получения.

Актиномикоз вымени, actinomycosis uberis (актиномикоз, лат. uber, uberis вы-

мя) — процесс развивается в паренхиме, чаще задних долей вымени, и сопровождается некрозом кожи. Сначала в молочной железе появляются бугорки, в центре к-рых возникают абсцессы, в последующем они вскрываются с образованием незаживающих свищей.

Акушерство – наука, изучающая вопросы физиологии и патологии половых процессов и осеменения животных, беременность, роды послеродовой период, а также болезни молочной железы и новорожденных.

Амелия – уродство, выражающееся в отсутствии у плода конечностей при наличии недоразвитых лопаток и костей таза.

Амнион – околоплодная оболочка; внутренняя , окружающая плод со всех сторон.

Анафродизия – неполноценность половых циклов или полное прекращение их у беременных самок.

Ановуляторный цикл – половой цикл, в котором овуляции (освобождения яйцеклетки) не происходит.

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

Антибиотики — специфические химические вещества, продуцируемые некоторыми грибами, актиномицетами, бактериями, а также растениями или животными тканями.

Антисептика — способы обеззараживания с помощью химических, механических, биологических и физических методов.

Аномалии вульвы и влагалища, anomaliae vulvae et vaginae (лат. anomalia не-

нормальность, vulva наружные половые органы самки, et и, vagina влагалище) - полное отсутствие вульвы или влагалища; частичное или полное заращение вульвы и влагалища; двойное влагалище (встречается очень редко); узость вульвы и влагалища; переразвитость мочевого клапана, превращающегося в фиброзную перегородку, препятствующую введению полового члена во влагалище.

Асфиксия, asphyxia, — «отсутствие пульса», удушье — прекращение или затруднение дыхания вследствие остановки или малого поступления в легкие кислорода. А. сопровождается расстройством кровообращения и сердечной деятельности.

Асептика — система профилактических мероприятий, направленных против возможности попадания микроорганизмов в рану.

Ателектаз, atelectasis, is, f (от гр. ateles неполный + ektasis растяжение), «спа-

дение легких» — отсутствие или ничтожное кол-во воздуха в альвеолах легкого или его части. А. бывает врожденный и приобретенный

Атрезия, atresia, ae, f (от гр. a- + tresis отверстие) — врожденное отсутствие того или иного отверстия в теле. А. чаще бывает у поросят.и щенят, реже у других животных.

Атрезия анального отверстия и прямой кишки, atresia ani et recti (от гр. atresia, лат. anus задний проход, et и, rectum прямая кишка): 1) анальное отверстие отсутсвует, прямая кишка располагается в виде слепого мешка в передней части тазовой полости; 2) анальное отверстие отсутствует, прямая кишка нормальная; 3) анальное отверстие в виде конического углубления, прямая кишка значительно укорочена, сужена; 4) анальное отверстие отсутствует, прямая кишка сообщается с мочевым пузырем, уретрой или влагалищем.

Анэструс – стадия полового покоя между двумя экстральными циклами.

Б

Баланит, balanitis, tidis, f (от гр. balanos головка полового члена -f- -itis воспа-

ление) — воспаление кожи головки полового члена. См. Баланопостит.

Баланопостит, balanopostitis, tidis, f (от гр. balanos ↑ + - postion крайняя плоть + -itis ↑) — воспаление кожи головки полового члена и препуциального мешка. Различают серозный, геморрагический, фибринозный, гнойный, острый и хронический баланопостит. Возникает на почве травм и ссадин головки пениса и препуция, проникновения в препуциальный мешок микрофлоры, при нарушении правил ухода и содержания за производителями. Б. встречается при вибриозе, трихомонозе, пузырьковидной сыпи. Наблюдается у всех видов самцов с.-х. животных.

Акушерство, гинекология и биотехника размножения животных. Н.М.Бессонова.

Бактерии — большая группа разнообразных по форме, преимущественно одноклеточных микроорганизмов растительного происхождения, имеющих клеточную стенку.

Беременность – физиологическое состояние оплодотворенных самок. Бесплодие животных – нарушение воспроизводства потомства, обусловленное ненормальными условиями существования самок и самцов.

В

Вагина искусственная – прибор для получения спермы от производителя. Вагинизм – судорожное сокращение мышц влагалища при половом акте или искусственном осеменении.

Вагинит, vaginitis, tidis, f; colpitis, tidis, f (от лат. vagina влагалище, rp. kolpos

влагалище +-itis воспаление), кольпит — воспаление влагалища, обычно сочетающееся с воспалением преддверия влагалища — вестибулит. В. регистрируют серозный, катаральный, гнойный, флегмонозный, некротический; острый и хронич.

Влагалище – орган совокупления и выведения плода.

Врожденное отсутствие заднепроходного отверстия, atresia ani (от лат. atresia врожденное отсутствие естественного отверстия в теле, anus задний проход). Чаще встречается у поросят.

Врожденное отсутствие соскового канала, atresia ductus papillaris (от лат. atresia , ductus канал, проток, papillaris сосочковый). Отмечается иногда у первотелок, причем сосковый канал отсутствует полностью или только его кожное отверстие.

Вульва – наружные половые органы самок.

Вульвит, vulvitis, tidis, f (лат. vulva наружные половые органы самки + гр. -itis воспаление), воспаление половых губ — следствие родовых травм, проникновение в ткани вульвы гнилостных, гноеродных бактерий. В. бывает серозный, катаральный, гнойный. Возможные осложнения: флегмона и некроз тканей.

Выворот влагалища –(выпадение) выпячивание стенки влагалища из половой щели.

Выворот и выпадение матки, inversio et prolapsus uteri (от лат. inversio, et и, prolapsus выпадение, uterus матка). Определяют тотчас после родов или в первые часы после них. Чаще встречается у коров и коз, реже у других животных.

Выворот препуциального мешка, inversio sacci praeputii (inversio, saccus ме-

шок, praeputium крайняя плоть). Наблюдается у быков мясных пород при механич. повреждениях.

Вымя – молочная железа самок животных.

Водянка плодных оболочек – представляет скопление большого количества околоплодной или мочевой или одновременно той и другой жидкости.

Г

Галакторея – недержание молока в молочной железе. Гаметы – половые клетки, сперматоциты и овоциты.