5. Все перечисленное.

Соотношение креатинина сыворотки крови и креатинина мочи служит

показателем

1. Клубочковой фильтрации.

2. Типа нефропатии.

3. Экскреторной функции почек.

4. Способности почек к осмотическому концентрированию.

5. Способности почек поддержать КЩР.

Прогрессирующее увеличение в сыворотке крови мочевины и креатинина

является результатом

1. Экссудативного воспаления в паренхиматозных органах.

2. Острого гепатита.

3. Нарушения секреторной функции почек.

4. Уменьшения гломерулярной фильтрации.

5. Активации резорбции в почечных канальцах.

Для креатинина в моче справедливо следующее, кроме

1. Попадает в мочу путем гломерулярной фильтрации.

2. Способен к минимальной тубулярной секреции.

3. Практически не реабсорбируется в почечных канальцах.

4. Выделяется у людей с развитой мускулатурой больше чем у лиц

с неразвитыми мышцами.

5. Образуется в почках при воспалении.

Для обмена мочевины не характерно

1. Образование в печени.

2. Фильтрация в гломерулах почки.

3. Практическое отсутствие реабсорбции в канальцах почки.

4. Является конечным продуктом обмена белков.

5. Концентрация в сыворотке крови зависит не только от функции почек.

Клиренс креатинина:

1. Выявляет более тяжелую степень почечной недостаточности,

чем определяется по повышению содержания креатинина в сыворотке крови.

2. Позволяет раньше обнаружить дисфункцию почек, чем содержание

креатинина и мочевины в сывортке крови

3. Это экспресс-метод диагностики.

4. Все перечисленное верно.

5. Все перечисленное неверно.

Белок Бенс-Джонса в моче появляется при

1. Миеломной болезни.

2. Пиелонефрите.

3. Мочекаменной болезни.

4. Тяжелой физической нагрузки.

5. Острой лихорадки.

При выраженной гематурии или лейкоцитурии содержание белка

желательно исследовать

1. После прекращения гематурии и лейкоцитурии.

2. Сопостовляя с белком сыворотки крови.

3. В профильтрованной моче.

4. Методом электрофореза.

5. После определения гемоглобина в моче.

Причиной повышения мочевины сыворотки может быть

1. Высокобелковое питание.

2. Ускорение метаболизма белка.

3. Прием глюкокортикоидов.

4. Олигурия.

5. Все перечисленное верно.

Причиной снижения уровня мочевины в сыворотке крови и моче

может быть

1. Нарушение клубочковой фильтрации.

2. Снижение почечной реабсорбции.

3. Усиление тубулярной секреции.

4. Авитаминоз.

5. Тяжелая печеночная недостаточность.

Реакция воды для приготовления краски по Романовскому при

исследовании крови на малярию должна быть

1. 6.6.

2. 6.8.

3. 7.0.

4. 7.6.

5. 8.4.

Наиболее устойчивы к воздействию факторов внешней среды

(включая воздействие химических веществ) яйца гельминтов

1. Карликового цепня.

2. Аскариды.

3. Трихостронгилид.

4. Анкилостоматид.

5. Среди перечисленных нет устойчивых форм.

Внутрилабораторное заражение в КЛД возможно при исследовании материала на

1. Аскаридоз, дифиллоботриоз.

2. Энтеробиоз, цистицеркоз, гименолепидоз.

3. Тениаринхоз.

4. Некатороз.

5. Эхинококкоз.

Для обнаружения вегетативных форм простейших собранный материал

должен быть исследован от момента дефекации

1. Через 6-12 часов.

2. Через 2-3 часа.

3. До 30 минут.

4. На следующие сутки.

5. В течение недели.

Для "взрослой" цисты E. Histolytica характерно

1. Одно ядро.

2. Два ядра.

3. Четыре ядра.

4. Восемь ядер.

5. Шестнадцать ядер.

Можно ли отвергнуть диагноз малярии по результату исследования

тонкого мазка крови

1. Да.

2. Нет.

3. Да, если просмотрено 100 полей зрения.

4. Да, если кровь взята во время подъема температуры.

5. Да, если просмотрено 200 полей зрения.

Укажите виды возбудителей малярии, которые имеют зрелый шизонт

с числом ядер меньше 12; пораженные эритроциты не увеличены

1. Трехдневная.

2. Овале.

3. Четырехдневная.

4. Тропическая.

При исследовании мочи пациента обнаружены крупные яйца гельминта

с терминальным шипом. Это характерно для

1. Остриц.

2. Мочеполовой шистосомы.

3. Аскариды.

4. Власоглава.

5. Анкилостомы.

Белковые фракции сыворотки крови можно разделить всеми следующими

методами, кроме

1. Высаливание.

2. Электрофорезом.

3. Хроматографией.

4. Иммунопреципитации.

5. Титрованием.

Электрофорез белков проводят на

1. Полиакриламидном геле.

2. Агаровом геле.

3. Бумаге.

4. Целлюлозо-ацетатных пленках.

5. Всех перечисленных носителях.

Нефелометрия - это измерение

1. Светопропускания.

2. Светорассеивания.

3. Светопоглощения.

4. Светоизлучения.

5. Вращения поляризованного света.

Метрологическому контролю подлежат

1. Поляриметры.

2. Центрифуги.

3. Агрегометры.

4. Измерительные приборы.

5. Все перечисленные выше приборы.

В фотоэлектроколориметрах необходимую длину волны устанавливают

с помощью:

1. Дифракционной решетки или призмы.

2. Толщины кюветы.

3. Светофильтра.

4. Ширины щели.

5. Типа источника света.

Диализ проводится с целью

1. Выявить реакционноспособные группы белков.

2. Получить изоферменты.

3. Отделить белки от низкомолекулярных солей.

4. Активация коферментов.

5. Контроль и стандартизация белков.

В сыворотке крови в отличие от плазмы крови отсутствует

1. Фибриноген.

2. Альбумин.

3. Комплемент.

4. Калликреин.

5. Антитромбин.

Рефрактометрия основана на измерении

1. Поглощения света.

2. Светопропускания.

3. Угла преломления света на границе раздела фаз.

4. Рассеяния света.

5. Вращения поляризованного луча.

Поляриметрия - метод, основанный на измерении:

1. Светопропускания.

2. Мутности.

3. Рассеяния света.

4. Преломления света.

5. Вращения поляризованного луча.

Оптический тест Варбурга основан на максимуме светопоглощения НАДН

при длине волны

1. 280 нм.

2. 340 нм.

3. 420 нм.

4. 560 нм.

5. 600 нм нм.

Исследование электролитов крови можно провести всеми следующими

методами, кроме

1. Пламенной фотометрии.

2. Потенциометрии.

3. Атомно-абсорбционной спектрофотометрии.

4. Кондуктометрии.

5. Электрофореза.

Монохроматичность излучения в спектрофотометрах обеспечивается

использованием

1. Водородной лампы.

2. Галогеновой лампы.

3. Дифракционной решетки или кварцевой призмы.

4. Светофильтров.

5. Фотоумножителя.

Хроматографическое разделение веществ основано на разной:

1. Подвижности в электрическом поле.

2. Сорбционной способности на носителе.

3. Осаждении в растворе.

4. Седиментации в градиенте плотности.

5. Оптической плотности.

Фотометрическое определение концентрации субстратов

и активности ферментов реализуется методом:

1. Конечной точки.

2. Кинетического исследования.

3. Измерения начальной скорости.

4. Любым из перечисленных выше.

5. Ни одним из перечисленных выше.

Основные характеристики светофильтров включают

1. Оптическую плотность.

2. Светорассеяние.

3. Максимум пропускания.

4. Толщину.

5. Диаметр.

Принципиальное отличие спектрофотометра от фотоэлектроколориметра

состоит в

1. Большей стабильности работы.

2. Большем диапазоне длин волн.

3. Большей точности.

4. Наличии монохроматора.