Микробиологическая диагностика коклюша

Коклюш относят к инфекциям с весьма длительным течением, что делает возможным применение двух основных (бактериологический, серологический) и одного вспомогательного (микроскопический) методов диагностики.

I. Микроскопический метод

Микроскопический метод является вспомогательным вариантом диагностики, так как коклюшные бактерии не имеют четких морфотинкториальиых особенностей.

Диагностическое значение имеет лишь 1 фаза существования коклюшных бактерий, соответствующих S - форме. В таком варианте патогенные штаммы возбудителя коклюша выделяются из организма. Это грамотрицательные, мелкие однородные, овоидной формы палочки без спор, но с нежными капсулами. При переходе во II и III фазы появляются полиморфные длинные или, наоборот, кокковидные бактерии. Для отличия названных стадий развития коклюшных палочек микроскопический метод незаменим.

II. Бактериологический метод

Выделение чистой культуры возбудителя является самым ранним и достоверным способом диагностики коклюша.

Материалом для исследования служат мокрота, слизь и смывы из носоглотки больного, выделяемые цри кашле или искусственно собранные стерильными носоглоточными тампонами.

Возбудитель коклюша очень требователен к питательным средам. Поэтому для его выделения используются элективные среды: казеиново-угольный агар (КУА), Борде-Жангу и молочно-кровяной агар Осиповой.

КАЗЕИНОВО-УГОЛЬНЫЙ АГАР ИЛИ СРЕДУ КУА готовят из сухого субстрата, выпускаемого ИЭМ имени Н. Ф. Гaмалей. Перед употреблением 4-5 г сухого порошка растворяют в 100 мл дистиллированной воды, стерилизуют в автоклаве 30 минут при +110 °C и, соблюдая стерильность, разливают в чашки Петри или пробирки. Готовые среды можно хранить при +4, +10 °C до двух недель.

Колонии коклюшных бактерий на среде КУА появляются на 3-4 день. Они мелкие, выпуклые, блестящие, гладкие, серовато-кремовые.

Колонии паракоклюшных бактерий такие же, но более крупные и дают коричневое окрашивание среды.

СРЕДА БОРДЕ-ЖАНГУ. 500 г мелко нарезанного очищенного картофеля заливают 1 л дистиллированной воды с 40 мл глицерина, варят до размягчения, а затем доводят дистиллированной водой до исходного объема, фильтруют через 2-3 слоя марли и дают отстояться до просветления. К 500 мл прозрачного картофельно-глицеринового экстракта добавляют 1,5 л солевого раствора, содержащего следующий комплекс солей: К₂НРО₄- 2,25 г; MgS0₄-0,075 г; КН₂Р0₄ -0,75 г; NaCl-7,5 г; КС1 -1,50 г. После этого прибавляют 60 г агар-агара (3%), кипятят на огне с асбестовой сеткой до растворения, устанавливают pH = 7,1-7,2, фильтруют и, разлив в соответствующую посуду, стерилизуют 30 минут при +110 °C или 25 минут при +120 °C. Это основа среды. Она может храниться очень долго.

Перед употреблением среду растапливают, охлаждают до 4-45 °C и добавляют 15-20% стерильной дефебринированной крови (барана, кролика, человека, лошади).

Готовая среда светло-вишневого цвета (без пузырьков воздуха). Для подавления посторонней микрофлоры добавляют 0,25-0,50 единиц пенициллина на 1 мл среды (1 ед. тормозит развитие коклюшных бактерий).

1.Колонии коклюшных бактерий на этой среде гладкие, блестящие, прозрачные, куполообразные с жемчужным или ртутным оттенком, окруженные зоной гемолиза.

2. Колонии паракоклюшных бактерий крупные с коричневым окрашиванием среды и зоной гемолиза.

МОЛОЧНО-КРОВЯНОЙ АГАР ОСИПОВОЙ. 5% МПА расплавляют на водяной бане, добавляют 1% поваренной соли и смешивают с таким же количеством обезжиренного подогретого молока. Стерилизуют в автоклаве при 0,5 атм. 40 минут. Горячую смесь отфильтровывают от свернувшегося молока, разливают по флаконам и автоклавируют при 0,5 атм. 20 минут. К остуженному до +45°, +50 °C агару добавляют 20% дефибринированной крови барана и пенициллин из того же расчета, что и в среде Борде-Жангу.

При выделении чистой культуры возбудителя следует учитывать большую требовательность к питательным средам:

1. сравнительно медленное развитие колоний, отсутствие потемнения среды вокруг колоний,

2. относительную биохимическую инертность, морфологическую однородность

3. и способность агглютинироваться специфической противококлюшной сывороткой первой фазы.

При выделении чистой культуры коклюшных бактерий очень важно отдифференцировать их от часто встречающихся гемоглобинофильных бактерий паракоклюша и септического бронхита.

Антигенная дифференциация коклюшных и паракоклюшных бактерий должна проводиться с учетом общности и различий в их антигенном составе.

При отсутствии необходимых монорецепторных сывороток отличием могут служить прочие, в частности культурально-биохимические признаки.

Свойство бактерий коклюша и их отличие от палочек паракоклюша
Свойства	Бактерии коклюша	Бактерии паракоклюша
Морфология	мелкие, коккобактерии	крупные палочки
Капсулы	есть, нежные	нет
Рост на простом МПА	-	+
Энергия роста	слабая, колонии видны на 3-4 день	средняя, колонии видны на 2-3 день
Образование коричневого пигмента на казеиновоугольном агаре (КУА)	-	+
Рост МПА с 0,1% тирозина	-	+
Гемолиз на кровяном МПА	+ четкий	+ слабый
Рост на пептонной воде,	-	+
с гематином	+	-
с дрожжами (экстракт)	+	-
Ферментация углеводов:
глюкозы	-	+
галактозы	-	+
левулезы	-	+
Разложение мочевины	-	+
Щелочение лакмусового молока	на 10-14 день	в первые 1-4 дня
Специфические видовые антигены	1	14
Типовые антигены	2, 3, 4, 5, 6, 13	8, 9, 10

Отношение к мочевине выясняется пробой Закса, широко используемой при дифтерии.