Диагноз.

При жизни птицы связан со значительными трудностями, поскольку клинические признаки не характерные и не дают основания заподозрить заболевание. Результаты исследования крови имеют значение лишь для установления диагноза при эритробластозе и миелобластозе. При других формах лейкоза изменения в периферической крови неспецифические, особенно при алейкемических проявлениях болезни. Поэтому решающим в диагностике лейкоза птицы являются результаты патоморфологических и вирусологических исследований. Для идентификации gs - антигена вирусов лейкоза используют кофал-тест, реакцию нейтрализации, РИФ-тест, реакции непрямой гемаглиетинации.

Эпизоотологическое состояние птицеводческих хозяйств в отношение лейкоза устанавливают на основании результатов вирусологических исследований, симптомов болезни с учетом возраста больных и показателей смертности птицы. Решающим в диагностике является патоморфологический метод исследования.

Дифференциальная диагностика.

Ставится на основании вышеописанных морфологических признаков. Предусматривается исключение туберкулеза, болезни Марека и грануламатоза. Туберкулёз характеризуется образованием мелких узелков в печени, селезёнке, лёгких, костном мозге. Туберкулёзные поражения, в отличие от лейкозных, значительно меньше и плотнее. Аллергическая реакция с использованием птичьего ППД- туберкулина и бактериологические исследования микобактерий туберкулёза обеспечивают безошибочный диагноз на туберкулёз. Болезнь Марека поражает преимущественно молодую птицу 4-5 - месячного возраста, тогда как на лейкоз болеют куры возрастом 6-12 мес. Новообразования выявляются в яичниках, редко в других органах, утолщаются отдельные нервы. Во время микроскопии выявляют малые, средние и крупные лимфоциты и лишь в отдельных случаях – плазматические клетки, тогда как лейкоз сопровождается появлением лимфобластов. При грануломатозе чаще поражаются слепые кишки, новообразования покрыты мощной оболочкой, большие опухоли содержат фибринозные массы.

Некоторые формы воспаления (острый паренхиматозный и интерстициальный гепатит, острый интерстициальный нефрит, инфекционные гранулемы и т.п.) могут симулировать картину опухолевого поражения. Поэтому их необходимо исключить по характерным морфологическим проявлениям.

3. Описание изготовленного микропрепарата.

Микропрепарат был изготовлен из печени сухим способом (пластинчатый метод по Талалаеву). Из консервирующей жидкости берется орган и вырезается пластинка толщиной 1-1,5 см. Подсушивается на воздухе. Из стекла (органического или обычного) готовим коробочки высотой до 2 см с таким расчётом, чтобы в них помещались вырезанная пластинка из органа. В эту коробочку (форму) наливаем расплавленный желатин, сразу кладем пластинку из органа и плотно прижимаем ее к стеклу дна коробочки. Остывая, желатин сжимается, поэтому в камеру по мере его остывания доливаются эти реактивы. Полное уплотнение среды происходит через 24-36 ч, что зависит от температуры и влажности окружающей среды. Для изготовления коробочек лучше всего пользоваться фотографическими пластинками (они имеют стандартные размеры различной величины и приготовлены из высококачественного стекла). Из них же вырезаются и боковые пластинки. Края и крышки склеиваем менделеевской замазкой или техническим клеем.

Приготовление желатина. В 500 мл дистиллированной воды помещаем 180 г желатина, даем ему набухнуть в течение 2-3 дней, затем нагреваем до расплавления. К раствору последовательно добавляем 800 мл глицерина, 350 мл насыщенного при нагревании раствора уксусной кислоты из расчёта 1 :500. Кипятится в водяной бане и фильтруется через марлю, прослоенную гигроскопической ватой.

4. Описание основных технических моментов и личной безопасности при вскрытии, обеззараживание места вскрытия и охраны окружающей среды, способов утилизации или уничтожения трупа и трупных остатков.

В данном случае в целях безопасного уничтожения трупа птицы, исключающего возможность распространения инфекционного процесса и загрязнения окружающей среды, применен метод обезвреживания в биотермических ямах и захоронение на скотомогильниках. Для перевозки трупов оборудована специальная машина с контейнерами.

В биотермических ямах труппы уничтожают и обезвреживают под действием высокой температуры (65-70С), возникающей в результате бурной жизнедеятельности термофильных бактерий. В течение 40 дней трупы уничтожают и обезвреживают даже от спорообразующих патогенных микробов при их прорастании в вегетативную форму.

Зарывание на скотомогильниках наиболее простой, но менее безопасный способ уничтожения трупов, так как в почве возбудители многих болезней могут долго сохранять жизнеспособность, поэтому этот метод утилизации трупов менее приемлем.

Во всех случаях трупы уничтожаются под строгим ветеринарно-санитарным надзором.

Трупы вскрываются в специально отведенном для этого месте – вскрывочной. К месту вскрытия трупы перевозят на специально оборудованной машине, кузов которой после использования обрабатывают дезинфицирующими веществами. Перед транспортировкой в естественные отверстия трупов, особенно павших от инфекционных болезней, вставляют ватные тампоны, смоченные дезинфицирующими растворами, а трупы помещают в бумажные и полиэтиленовые, герметичные мешки.

Производящий вскрытие персонал работает в спецодежде: халат, полотняная шапочка, клеенчатый фартук, нарукавники, резиновые перчатки, сапоги. Все, присутствующие при вскрытии, надевают халаты. Перед работой руки осматривают, подногтевые пространства и венчики пальцев смазывают спиртовым раствором йода. Ссадины, порезы и царапины покрывают коллодием или лейкопластырем. Коду рук присыпают тальком и надевают перчатки.

При вскрытии трупов поддерживается чистота, соблюдается аккуратность и осторожность в работе. При ранении рук их быстро обмывают, обрабатывают спиртовым раствором йода, забинтовывают, надевают новую перчатку и продолжают работу.

После окончания работы трупный материал убирают, проводят заключительную обработку и дезинфекцию спецодежды, обуви, инструментария, стола и секционного помещения. Инструменты обмывают тёплой водой и обезвреживают дезинфицирующим раствором (10% формалин) или кипячением в воде с 2% соды. Сапоги, фартуки, нарукавники обмывают теплой водой с мылом и дезинфицируют 2% - ным раствором хлорамина. Халаты и полотняные шапочки периодически обеззараживают кипячением.

Перчатки моют не снимая с рук, дезинфицируют (4%- ный формалин), затем осторожно снимают и руки тщательно, при помощи щетки, моют теплой водой с мылом и дезинфицируют спиртом. В качестве дезинфицирующего и дезодорирующего средства после вскрытия применяют 1-3%- ный раствор калия перманганата. В этот раствор руки погружают на 3-5 минут, а затем для удаления с кожи бурой окраски - в насыщенный раствор щавелевой кислоты или 1%- ный раствор соляной кислоты.

Для дезинфекции столов и секционного помещения используют формалин и хлорную известь. Обработка продолжается от 20-30 минут до 102 часов. Дезинфицирующие средства хранятся в специальном, закрытом на замок, помещении и в плотно укупоренной таре, исключающей испарение веществ.

Список использованной литературы.

1. Байдевлятов А.Б. Справочник по болезням

сельскохозяйственной птицы. – Киев: Урожай, 1993. –с.250.

2. Гусев В.Ф., Кононов Г.А. Справочник по болезням птиц. – Л.:

Колос, 1969.- 363.

3. Жаров А.В., Иванов И.В., Кунаков А.В. и др. Вскрытие и

патологоанатомическая диагностика болезней

сельскохозяйственных животных. –М.: Колос, 1999. –с.271.

4. Жаров А.В., Шишков В.П. и др. Патологическая анатомия

сельскохозяйственных животных. –М.: Колос, 1999. –с.568.

5. Кузнецов А.Ф. Справочник ветеринарного врача. –СПб:

«Лань», 2001.-с.896.

6. Карышева А.Ф. Специальная эпизоотология: Учебник. –К.:

Вища освіта, 2002.- с.703.

7. Осидзе Д.Ф. Инфекционные болезни животных: Справочник. –

М.: Агропромиздат, 1987.

8. Селянский В.М. Анатомия и физиология сельскохозяйственной птицы. 2 - е изд., доп. и перераб. М.: Колос, 1972. – с.360.