- •Гапоненко Елена Николаевна лечение гнойных ран у животных с помощью полимерного покрытия
- •Автореферат
- •1. Общая характеристика работы
- •2. Собственные исследования
- •2.1. Материал и методы исследования
- •2.2. Результаты собственных исследований
- •2.2.1. Результаты планиметрических исследований
- •2.2.2. Результаты цитологических и бактериологических исследований
- •2.2.3. Клинико-морфологическая картина течения раневого процесса при использовании лекарственной полимерной композиции с лигфолом и новокаином
- •2.2.4. Клннико-морфологическая картина и течение раневого процесса при использовании лекарственной полимерной композиции с метацидом
- •2.2.5. Сканирующая электронная микроскопия в расшифровке патогенеза раневого процесса
- •3. Выводы
- •4. Практические предложения
- •5. Список работ, опубликованных по теме диссертации
2. Собственные исследования
2.1. Материал и методы исследования
Работа выполнялась в условиях кафедры хирургии Воронежского государственного аграрного университета имени К.Д. Глинки (ВГАУ) в период с 1999 по 2002 год. Под наблюдением находились беспородные собаки в возрасте 4-5 лет, обоих полов, массой тела 25-30 кг, подобранных по принципу парных аналогов.
Гематологические, биохимические, бактериологические, морфологические, гистохимические, электронномикроскопические исследования проводили в лаборатории кафедры хирургии; в Воронежской областной ветеринарной лаборатории; в отделах: микробиологии, вирусологии и иммунологии; физико-
химических методов исследований ВНИВИ патологии, фармакологии и терапии (г. Воронеж), а также в Воронежском государственном техническом университете.
Животных, подобранных для эксперимента, разделили на 3 группы по 10 животных в каждой:
1 группа (опытная). Гнойные раны этих животных лечили комплексным препаратом на основе полимерного геля с лигфолом и новокаином.
2 группа (опытная). Инфицированные раны в этой группе собак лечили полимерным гелем с метацидом.
3 группа (контроль). Гнойные раны у этих животных лечили бальзамическим линиментом по А.В. Вишневскому.
Всем экспериментальным животным в области бедра с латеральной стороны готовили операционное поле по Пирогову, затем под местной инфильтрационной анестезией (Э.И. Веремей, В.М. Власенко, А.Н. Елисеев и др., 2001) по трафарету наносили резаные раны, площадью 400 мм2. Скальпелем с ограничителем заданной глубины (до 3 см) рассекали кожу, фасции и мышцы. После остановки кровотечения рану инфицировали методом орошения, 2 мл взвеси из суточной культуры патогенного Staphylococcus aureus (1 мл взвеси содержал 1 млрд. микробных тел). Через 48 часов в ране наблюдалось выраженное острое гнойное воспаление. Раны заживали по вторичному натяжению, без наложения сближающих швов (П.И. Толстых, 1976; А.В. Николаев, 1979; О.Н. Разданов, 1987; Б.Н. Арутюнян, 1990).
Планиметрические методы исследования проводили по методике Л.П. Поповой (1942), для чего контуры раны обводили на стерильном стекле, прижатом к последней, а затем переносили на миллиметровую бумагу и определяли площадь исследуемой раны. Уменьшение площади раны измеряли на 5,10,12,15 и 20 сутки. Полученные данные обрабатывали методом вариантной статистики по Стьюденту, вычисляли процент ускорения заживления ран у животных опытной серии по отношению к контролю по формуле:
(t2 - t|) х 100 : t], где: t{ - время полного заживления в контрольной серии; t2 - время полного заживления в опытных сериях.
По данной формуле определяли также темп очищения ран от гнойных и некротических масс в зависимости от применяемого метода лечения.
Отношение уменьшения раневой поверхности опытной серии по сравнению с контролем вычисляли по формуле:
(S2 - S1) х 100 : S1, где: S1 - площадь раны в контрольной серии; S2 - площадь раны в опытных сериях.
Цитологический анализ мазков-отпечатков проводили по М.П. Покровской и М.С. Макарову (1942). Мазки-отпечатки готовили путем осторожного 2-х кратного прикладывания стерильного предметного стекла к одному и тому же участку раневой поверхности, предварительно очистив его сухим марлевым тампоном. Отбор материала проводили на 3,5,7 и 10 сутки после начала лечения. Мазки-отпечатки сушили на воздухе, фиксировали спирт-эфиром и окрашивали азур-эозином по методу Романовского-Гимза.
Для бактериологического исследования взятый после обычного туалета с 1 см раневой поверхности на границе со здоровой тканью тампоном материал помещали в пробирку с 0,5 мл стерильного физиологического раствора. Тампон ополаскивали в жидкости путем встряхивания пробирки в течение 10 минут, затем отжимали о внутренние стенки пробирки и удаляли. Жидкость многократно перемешивали пипеткой. Отдельной пипеткой на чашку с питательными средами МПБ, МПА с 8-10% раствором хлорида натрия и 5% дифибринированной крови, агар Эндо и мясопептонный печеночный бульон Китт-Тароцци. После инкубации посевов при 37 градусах в течение 18-20 часов подсчитывали общее количество микробных колоний на твердых питательных средах, а в среде Китт-Тароцци - наличие роста анаэробов. Для определения типов микробов из выросших колоний проводят микроскопию препаратов - мазков с последующей окраской по Грамму (В.Л. Байрак, В.М. Беляев, С.С. Гительсон, 1980).
Чувствительность выделенных культур к антибиотикам определяли методом дисков по общепринятой методике.
Для морфологических и биохимических исследований кровь брали из V. Saphena утром перед кормлением, нанесением ран и спустя 3,7,10,15 и 20 суток от начала лечения.
Исследования проводили различными методами. Количество эритроцитов определяли с помощью счетчика микрочастиц «Пикоспель» (Франция), гемоглобин - гемометром Сали. Лейкограмму выводили по общепринятой методике в мазках крови, окрашенных по Романовскому-Гимзе (И.П. Кондрахин, Н.В. Кирилов, А.Г. Малахов и др., 1985).
В сыворотке крови определяли общий белок рефрактометрически, белковые фракции - нефелометрическим методом по Олду и Маккорду в модификации С.А. Карпюка (1962).
Для гистологического исследования кусочки тканей из воспаленных участков ран животных фиксировали в 10% растворе нейтрального формалина. После проводки в спиртах возрастающей крепости материал заливали в целлоидин - касторовое масло - парафин. Резали на ротационном микротоме. Срезы толщиной 8 мкм окрашивали гематоксилином и эозином по Ван-Гизону. Фибрин выявляли по Шуенинову, бактерии - карболовым тионином по Николя. Для дифференцировки клеточных элементов крови срезы окрашивали азур П - эозином (Э. Пирс, 1962; Р. Лилли, 1969; Г.А. Меркулов, 1969; А.И. Кононский, 1976).
Для электронномикроскопического исследования образцы тканей, сразу же после иссечения из раны фиксировали в 2,5% глютаровом альдегиде на 0,114 М коллоидиновом буфере на холоде с последующей дофиксацией в 1%-ном фиксаторе на том же буфере. Материал обезвоживали в ацетоне возрастающей концентрации и заливали в ЭПОН - 812. Срезы готовили на ультрамикротоме «Тесла», контрастировали цитраном свинца и уранилацетатом. Просматривали в электронном микроскопе БС-500 (ЧССР).
Для сканирующей электронной микроскопии материал фиксировали в 2,5% растворе глютаральдегида на 0,2 М какодилатном буфере. Отмытые объекты постфиксировали 2% раствором четырехокиси осмия в 0,2 М какодилатном буфере. Постфиксированный материал отмывали в дистиллированной воде, а затем обезвоживали в спиртах восходящей крепости; из абсолютного этанола объект проводили через серию амилацетатэтаноловых смесей восходящей концентрации. Обезвоженный материал высушивали в сжиженном N20 (36,5° С; 71,4 атм.). Поверхность объекта покрывали электропроводящим слоем, состоящим из золота и просматривали в электронном микроскопе «Тесла» БС-300 (ЧССР). Фотографировали на «Фото-64».
Результаты исследований подвергнуты математической обработке с использованием стандартных программ статистического анализа для IBM PC. Достоверность результатов определялась по параметрическому критерию Стьюдента и непараметрическому критерию Вилкоксона-Манна-Уитни (И.А. Ойвин, 1960; Е.В. Гублер, А.А. Генкин, 1973; А.И. Венчиков, 1974; В.Ю. Урбах, 1975).