Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

2 курс / Микробиология 1 кафедра / Доп. материалы / Топ_10_конспектов_по_микробиологии

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
13.59 Mб
Скачать

веществ, то при уменьшении содержания последних в питательной среде уменьшается и скорость роста. Снижение происходит также из-за большой плотности бактериальных клеток, снижения парциального давления кислорода, накопления токсических продуктов обмена. Продолжительность стационарной фазы составляет несколько часов и зависит от вида бактерий и особенностей их культивирования.

4. Фаза отмирания наступает вследствие накопления кислых продуктов обмена или в результате автолиза под влиянием собственных ферментов. Продолжительность этой фазы колеблется от десятка часов до нескольких недель.

Постоянное нахождение бактериальной популяции в логарифмической фазе роста наблюдается в непрерывной культуре, что достигается постепенным дозированием поступления питательных веществ, контролем плотности бактериальной суспензии и удалением метаболитов. Непрерывные бактериальные культуры используются в биотехнологических процессах.

На жидких питательных средах рост и размножение бактерий проявляются в виде:

диффузного помутнения

образования придонного осадка

образование поверхностной пленки

22

Особенность размножения бактерий рода Leptospira на жидких средахотсутствие видимых проявлений роста.

На плотной питательной среде

На плотных питательных средах бактерии образуют скопление клеток колонии, которые принято считать потомками одной клетки. Колонии различаются формой, размерами, поверхностью, прозрачностью, консистенцией и окраской. Колонии с гладкой блестящей поверхностью принято называть колониями в S-форме (от англ. smooth — гладкий). Колонии с матовой шероховатой поверхностью называют R-формами (от англ. rough - шероховатый).

Окраска колоний определяется способностью бактерий синтезировать пигменты. Пигменты различаются по цвету, химическому составу и растворимости.

Среди продуцируемых бактериями пигментов встречают:

Каротиноиды-жирорастворимые пигменты красного, желтого и оранжевого цветов. Они встречаются у представителей рода

Mycobacterium, Micrococcus;

пирроловые-к ним относится спирторастворимый пигмент продигиозан, встречающийся у Serratia marcescens;

фенозиновые-к этой группе относится водорастворимый пигмент Pseudo monas aeruginosa пиоцианин, который, выделяясь в питательную среду, окрашивает ее;

меланины — нерастворимые пигменты черного и коричневого

цветов (у бактерий рода Porphyromonas). Значение пигментов

предохраняют бактериальную клетку от УФ-лучей

обезвреживают токсичные кислородные радикалы

обладают антибиотическими свойствами (т.е. подавляют рост сопутсвующей микрофлоры)

принимают участие в реакциях, сопутствующих фотосинтезу в фототрофных бактериях

Вид, форма, цвет и другие особенности колоний, а также характер роста на плотных питательных средах определяются как культуральные свойства бактерий и учитываются при их идентификации.

Помимо бинарного деления некоторые представители прокариот имеют иные способы размножения: актиномицеты могут размножаться путем фрагментации гифов; представители семейства Streptomycetaceae — спорами. Микоплазмы являются полиморфными бактериями, что обусловлено особенностями их размножения. Помимо поперечного деления микоплазмы могут размножаться почкованием.

Хламидии проходят через цикл развития, который предусматривает существование двух форм: внеклеточных инфекционных, малых размеров элементарных телец, не обладающих способностью к бинарному делению, и внутриклеточного, метаболически активного, крупных размеров ретикулярного тельца, способного к бинарному делению.

Некультивируемые формы бактерий. Некоторые неспорообразующие бактерии способны переживать неблагоприятные для размножения условия окружающей среды, переходя в некультивируемое (покоящееся) состояние.

В этом состоянии бактериальные клетки сохраняют свою метаболическую активность, но не способны к непрерывному клеточному делению, необходимому для роста на жидких и плотных питательных средах. При смене условий существования, в частности при попадании в организм человека или животных, клетки вновь приобретают способность к размножению и сохраняют свой патогенный потенциал.

Переход в некультивируемое состояние обеспечивает сохранение патогенных бактерий в межэпидемические и межэпизоотические периоды. Выявить наличие бактерий, находящихся в некультивируемой форме, можно с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) или применением красителей, меняющих окраску в окисленной и восстановленной форме. Возврат способности к размножению и росту находящихся в покоящейся форме клеток могут вызвать естественные факторы: простейшие, обитатели почв и водоемов, фитогормоны, выделяемые корневыми волосками растений.

24

КУЛЬТИВИРОВАНИЕ БАКТЕРИЙ

Оглавление

 

Условия культивирования бактерий ........................................................................................................

3

Классификация питательных сред ...........................................................................................................

5

Ферменты бактерий. Дифференциально-диагностические среды .......................................................

7

Выделение чистой культуры бактериальных клеток ..............................................................................

9

Культивирование анаэробов ..................................................................................................................

12

Культуральный метод микробиологической диагностики ..................................................................

15

Условия культивирования бактерий

Культивирование микроорганизмов проводят с различными целями: для выделения и изучения свойств возбудителя при диагностике инфекционных заболеваний, накопления биомассы при приготовлении вакцин и диагностикумов и др. Культивирование бактерий возможно лишь при создании определенных условий для их жизнедеятельности. Для этого необходимо соблюдать ряд условий.

• Наличие полноценной питательной среды. К питательным средам предъявляется ряд требований:

1.Питательность - должны содержать доступные источники органогенов (азота, водорода, кислорода, углерода и энергии), неорганические соединения в виде различных солей, факторы роста.

2.Изотоничность-должны содержать набор солей для поддержания осмотического давления - определенная концентрация хлорида натрия.

3.Оптимальный рН (кислотность) среды - для большинства бактерий 7,2- 7,6, хотя есть ацидофильные (ниже 5,0) и алкалофильные (выше 8,0) виды.

4.Оптимальный Eh (электронный потенциал) - свидетельствующий о содержании в среде растворенного кислорода. Он должен быть высоким для аэробов и низким для облигатных анаэробов).

5.Стерильность -чтобы не было других бактерий.

Температуру культивирования, которая влияет на скорость размножения. По отношению к температуре роста бактерии разделяют на три основные группы - психрофилы, мезофилы и термофилы.

Психрофилы живут и размножаются при пониженных температурах (от -10 до 20 °С).

Мезофилы включают бактерии, температурный диапазон роста которых находится между 10 и 45 °С. Оптимальная температура для их культивирования - 25-37 °С.

Термофилы способны расти при повышенных температурах (42-

50 °С).

Для поддержания требуемой температуры используют специальные приборы - термостаты.

Атмосферу культивирования.

— Для роста и размножения строгих аэробов необходим кислород. Аэробы хорошо растут на поверхности агара на чашках Петри или в тонком верхнем слое жидкой среды. Факультативные анаэробы культивируют в аналогичных условиях.

Микроаэрофилы, нуждающиеся в пониженной концентрации кислорода, культивируют в атмосфере 5% СО2 в специальных СО2- инкубаторах либо посевы помещают в эксикаторы, в которых устанавливают горящую свечу.

Облигатные анаэробы для своего роста и размножения требуют исключения доступа кислорода воздуха.

3

Время культивирования зависит от времени генерации. Большинство бактерий культивируют для получения видимого роста в течение 18-48 ч. Для ряда бактерий требуются более длительные сроки культивирования.

Освещение. Для выращивания фототрофных микроорганизмов необходим свет. Некоторые условно-патогенные микобактерии в зависимости от освещенности образуют пигмент, что используют при их идентификации.

4

Классификация питательных сред

В зависимости от консистенции питательные среды могут быть:

жидкими;

полужидкими;

плотными.

Плотность среды достигается добавлением агара. Агар - полисахарид, получаемый из водорослей. Он плавится при температуре 100 °С, но при охлаждении остывает при температуре 42-50 °С. Агар добавляют в концентрации 0,5% для полужидких сред и 1,5-2% для создания плотных сред.

Для посева крови (выделения гемокультуры) используют двухфазные среды. Они состоят из слоя агара, покрывающего одну сторону флакона, и налитого в этот флакон обогащенного ростовыми факторами бульона.

Двухфазная среда

Расплавленный агар разливают в чашки Петри по 10-15 мл, в пробирки - по 7-10 мл. Налитый в пробирки агар можно скосить для получения скошенного агара. Для этого после разлива агара пробирки кладут на наклонную поверхность до полного застывания агара.

Скошенный агар

5

По происхождению различают:

естественные среды - готовят из овощей (картофеля), яиц, молока, сыворотки крови;

искусственные среды - включают переработанные естественные продукты: мясную воду, печеночный перевар, мозговой экстракт; вещества, полученные из этих продуктов (пептон, дрожжевой экстракт);

синтетические среды - создают из химических соединений с точным химическим составом.

В зависимости от состава и цели применения различают:

основные среды;

специальные среды, которые в зависимости от состава и цели применения разделяют на:

сложные;

элективные;

дифференциально-диагностические;

комбинированные.

К основным (простым, универсальным) средам относят пептонную воду, питательный бульон, мясопептонный агар. На основе этих простых сред готовят сложные среды, например, сахарный и сывороточный бульоны, кровяной агар.

В зависимости от назначения специальные среды подразделяют на элективные, обогащения, дифференциально-диагностические.

Под элективными понимают среды, на которых лучше растет какой-то определенный микроорганизм. Например, щелочной агар, имеющий рН=9,0, служит для выделения холерного вибриона. Другие бактерии, в частности кишечная палочка, из-за высокого рН на этой среде не растут.

Среды обогащения стимулируют рост какого-то определенного микроорганизма, ингибируя рост других. Например, среда, содержащая селенит натрия, стимулирует рост бактерий рода Salmonella, ингибируя рост кишечной палочки.

Дифференциально-диагностические среды служат для изучения ферментативной активности бактерий. Они состоят из простой питательной среды с добавлением субстрата, на который должен подействовать фермент, и индикатора, меняющего свой цвет в результате ферментативного превращения субстрата.

Комбинированные питательные среды сочетают в себе элективную среду, подавляющую рост сопутствующей микрофлоры, и дифференциальную среду, диагностирующую ферментативную активность выделяемого микроорганизма. Примером таких сред служат среда Плоскирева и висмутсульфитный агар, используемые при выделении патогенных кишечных бактерий. Обе эти среды ингибируют рост кишечной палочки.

6

Ферменты бактерий. Дифференциально-диагностические среды

Ферментативную активность бактерий изучают для идентификации выделенной чистой культуры бактерий, в частности, для установления возбудителя инфекционного заболевания, до рода и вида. Для этих целей используют различные дифференциально-диагностические среды.

В настоящее время для биохимической идентификации бактерий часто вместо дифференциально-диагностических сред используют готовые тестсистемы - полистероловые или картонные планшеты с лунками, в которые помещены сухие дифференциально-диагностические среды или субстраты, на

которые

должен

подействовать

искомый

бактериальный

фермент. Идентификацию выделенной чистой

культуры

в тест-системах

проводят следующим образом.

 

 

Готовые тест-системы

Из выделенной чистой культуры готовят бактериальную суспензию в физиологическом растворе или в прилагаемом буфере.

Проводят инокуляцию приготовленной суспензии в лунки планшета.

Инкубируют (обычно при температуре 37 °С в течение 18-24 ч).

Оценивают результат по изменению окраски дифференциальнодиагностических сред в планшете.

Помимо изучения ферментативной активности, с помощью дифференциально-диагностических сред для идентификации бактерий определяют ферменты, принимающие участие в процессах получения энергии: каталазу, нитратредуктазу, оксидазу.

Каталаза расщепляет перекись водорода на молекулярный кислород и воду. Этим ферментом обладают облигатные аэробы и факультативные анаэробы. Для определения каталазы в пробирку с 2 мл жидкой бактериальной культуры добавляют несколько капель 3% перекиси водорода. Появление пузырьков газа свидетельствует о наличии каталазы.

Нитратредуктаза восстанавливает нитрат в нитрит, при этом нитрат используется конечным акцептором электронов в процессе некислородного нитратного дыхания, которое характерно для факультативных анаэробов. Определение нитритов проводят крахмало-йодной реакцией, основанной на том, что в кислой среде нитриты окисляют йодистый калий с выделением

7