- •Оглавление
- •Введение
- •1. Основные этапы проведения тестирования на антибиотикочувствительность
- •1.1. Приготовление питательных сред для определения чувствительности
- •1.2. Приготовление суспензии исследуемых микроорганизмов (инокулюма)
- •1.2.1. Приготовление инокулюма из агаровой культуры
- •1.2.2. Приготовление инокулюма из бульонной культуры
- •2. Метод диффузии в агар
- •2. 1. Методика диффузионного метода исследования антимикробной активности антибиотиков
- •2.2. Другие методы диффузии
- •2.3. Преимущества и недостатки диффузионного метода
- •3. Метод серийных разведений
- •3.1. Метод серийного разведения антибиотика в питательной среде (бульоне).
- •3.2. Метод серийных разведений в плотной питательной среде.
- •3.3. Преимущества и недостатки метода серийных разведений
- •4. Турбидиметрический метод
- •4.1. Методика турбодиметричекого метода
- •4.2. Преимущества и недостатки турбидиметрического метода
- •Заключение
3.3. Преимущества и недостатки метода серийных разведений
К преимуществам данного метода можно отнести: высокую воспроизводимость; возможность тестирования всех клинически значимых бактерий; широкий диапазон концентраций; этот метод можно отнести к количественным; при использовании микроразведений – уменьшается количество расходуемых материалов
Среди недостатков выделяют: трудоемкость процесса тестирования;
значение минимальной подавляющей концентрации находится в промежутке между двумя последовательными разведениями антибиотика.
4. Турбидиметрический метод
Принцип турбидиметрического метода заключается в логарифмической
зависимости степени угнетения роста бактериальной популяции в жидкой питательной среде от концентрации антибиотика. О задержке роста микроорганизмов судят по величине мутности среды, которая может быть фотометрически измерена после инкубации (мутность – аналог поглощения).
4.1. Методика турбодиметричекого метода
В день испытания полученную культуру разбавляют буферным раствором для достижения мутности суспензии (25±2)% (коэффициент пропускания) с использованием спектрофотометра при длине волны 580 нм.
Полученную суспензию используют в качестве посевного материала. На каждые 1000 мл жидкой питательной среды прибавляют необходимое количество посевного материала (мл) (определенное экспериментально, в зависимости от чувствительности тест-микроорганизма к испытуемому антибиотику). Затем 9 мл инокулированной среды вносят в стеклянную или пластмассовую пробирку и добавляют 1 мл рабочего раствора стандартного образца с соответствующей концентрацией (С1, С2 и С3) или 1 мл рабочего раствора испытуемого образца с соответствующей приблизительной концентрацией (И1, И2 и И3). Одновременно готовят отрицательный контроль, состоящий из 9 мл стерильной питательной среды и 1 мл растворителя (буферного раствора) и положительный контроль, состоящий из 9 мл инокулированной среды и 1 мл растворителя (буферного раствора). Контрольные пробирки используют для настройки оптического прибора и контроля роста тест-микроорганизма.
Для каждой концентрации рабочих растворов стандартного и испытуемого образцов используют 6 повторностей. При этом должно быть проведено несколько определений, результаты которых объединяют при статистической обработке для достижения требуемой точности. Пробирки располагают случайным образом или по схеме латинского квадрата, или в виде рандомизированных блоков и инкубируют при температуре (37±1) °С в течение 4-5 ч в подходящем устройстве (термостат, термошейкер, водяная баня), позволяющем обеспечить однородность температурного режима.
После инкубации размножение микроорганизмов останавливают добавлением во все пробирки 0,5 мл 12 % раствора формальдегида, в том числе содержащие положительный и отрицательный контроли. Оптическую плотность взвеси тест-микроорганизмов в пробирках определяют спектроскопическим методом.
4.2. Преимущества и недостатки турбидиметрического метода
К недостаткам данного метода можно отнести: метод неприемлем для плотно окрашенных растворов; турбидиметрические методы по сравнению с
методами диффузии обычно являются сравнительно менее точными, так как
микроорганизм, растущий на жидких питательных средах, при рабочих условиях проведения анализа более чувствителен к изменчивым факторам
внешней среды; на результат могут повлиять и некоторые сопутствующие вещества, содержащиеся в испытуемом образце; при методах диффузии влияние этих веществ вследствие их меньшего проникновения в агар устраняется (эти вещества, например, жирные кислоты или глюкозодегидрогеназа)
Преимущества метода: высокая чувствительность (а т.к. применяются довольно большие разведения исследуемых жидкостей, это приводит к значительному снижению концентрации пигментных веществ, мешающих проведению анализа, соответственно возможно проведение анализа для окрашенных р-ров); этот метод подходит для количественного определения любых антибиотиков при условии наличия стандартного раствора изучаемого препарата: можно использовать как экспресс-метод – ответ получают через 3,5-4 ч.