- •Оглавление
- •Определение болезни.
- •Экономические потери.
- •Характеристика возбудителя.
- •Восприимчивые животные.
- •Локализация возбудителя.
- •6. Жизненный цикл возбудителя.
- •Эпизоотологические данные
- •Патогенез и иммунитет.
- •Течение и симптомы болезни.
- •Патологоанатомические изменения.
- •Патологоанатомический диагноз:
- •Диагностика.
- •Дифференциальная диагностика.
- •13. Лечение.
- •14. Исход.
- •15.Профилактика.
- •16. Выводы и рекомендации.
- •17. Список использованной литературы.
Патологоанатомический диагноз:
Острый геморрагический дуоденит.
Серозное воспаление брыжеечных лимфоузлов.
Острая венозная гиперемия печени, почек, легких, слизистой оболочки ротовой полости.
Рыхло свернувшаяся кровь в полостях сердца.
Истощение, эксикоз.
Рис 6. Двенадцатиперстная кишка животного, павшего от эймериоза. Острый геморрагический дуоденит.
Диагностика.
При диагностике эймериоза у кроликов нужно иметь в виду, что среди кроликов широко распространено эймерионосительство., особенно среди взрослых кроликов, по этому при постановке прижизненного диагноза на эймериоз кроликов учитывают данные анамнестических, эпизоотологических, клинических и лабораторных исследований.
Фекалии больных животных исследуют с помощью методов Дарлинга, Фюллеборна, Котельникова и Хренова. С помощью них выявляют ооцисты паразитов. У павших кроликов исследуют этими же методами соскобы со слизистой кишечника, желчных протоков, их содержимое. При наличии белых узелков их вырезают, раздавливают на стекле и рассматривают под микроскопом при малом и среднем увеличении. У больных эймериозом кроликов при исследовании фекалий, содержимого кишечника, желчных протоков, белых узелков на печени находят большое количество ооцист эймерий.
В данном случае диагноз на эймериоз был поставлен комплексно, учитывались анамнестические, эпизоотологические, клинические признаки, микроскопическое исследования фекалий методом Дарлинга.
Мы проводили исследование по методу Дарлинга: брали 3 - 5г свежих фекалий, поместили их в фарфоровую ступку, растирали фекалии в ступке пестиком до получения однородной взвеси с десятикратным количеством водопроводной воды. Получившуюся массу пропустили через один слой марли в баночку Флоренского и дали отстоятся 5мин. После надосадочную жидкость слили, а осадок поместили в центрифужную пробирку и центрифугировали в течение 2мин при 1500 об/мин, затем с центрифужной пробирки слили надосадочную жидкость, а к осадку долили жидкость Дарлинга (равные части глицерина и насыщенного раствора поваренной соли). Чистой стеклянной палочкой размешали смесь и повторно центрифугировали 2мин при 1500 об/мин. Далее гельминтологической петлей с поверхности жидкости сняли 3-4 капли и поместили их на обезжиренное предметное стекло, накрыли покровным стеклом и микроскопировали.
При исследовании фекалий по методу Дарлинга в первый день курации в поле зрения микроскопа было обнаружено 40 ооцист эймерий, через день – в поле зрения микроскопа было обнаружено 15 ооцист эймерий и в предпоследний день – в поле зрения микроскопа было обнаружено 3 ооцисты эймерий. В конце курации, после проведенного курса лечения раствором «Торукокс 2,5%» (Solutio «Torucocxum 2,5%»), в поле зрения микроскопа ооцист эймерий не обнаружено.
Температура, пульс, дыхание, гематологические показатели в пределах физиологической нормы. Общее состояние кролика удовлетворительное, корм и воду принимает охотно. Из полученных результатов можно сделать вывод, что кролик является носителем ооцист эймерий.