Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
лекция 7-19.ppt
Скачиваний:
44
Добавлен:
26.12.2019
Размер:
6.89 Mб
Скачать

Экстремальные термофильные бактерии

Архебактерии Pyrococcus furiosus

(«яростные огненные шарики») обитают в сильнокислой среде «черных курильщиков», глубоководных вулканов,

P. furiosus развиваются при отсутствии молекулярного кислорода, потребляют CO2 при температурах 70-103°C.

Thermus aquaticus

Грамотрицательная палочковидная экстремально термофильная бактерия, облигатный аэроб, развивается при температуре выше 55 °С (оптимальной является температура 70 °C). Обитает в горячих источниках, гейзерах, два штамма были выделены из горячей водопроводной воды

Полимеразная цепная реакция

Объем реакционной смеси 25–50 мкл

1 цикл включает -денатурацию

-отжиг (ренатурация) реассоциация комплементарных цепей -синтез ДНК (удлинение праймера) в присутствии ДНК-полимеразы,

дезоксирибонуклеотидтрифосфатов и праймеров.

Термоциклер (амплификатор)

Taq-полимераза (70-75оС)

ПЦР

Схематическое изображение

первого цикла ПЦР.

1 - Денатурация при 94-96°C

(до 2 мин).

2 - Отжиг при 68 °C (до 2 мин). t отжига на 4—5°С ниже температуры плавления

праймеров.

3 - Элонгация при 72 °C для

Taq- и Pfu-полимераз.

4 - Закончен первый цикл.

 

Две получившиеся ДНК-цепи

 

служат матрицей для следующего

 

цикла, поэтому количество

 

матричной ДНК в ходе каждого

P = полимераза

цикла удваивается.

25-30 циклов

 

Результат электрофоретического разделения продуктов ПЦР- реакции. Агарозный гель окрашен бромистым этидием. Визуализация посредством облучения ультрафиолетом с длиной волны 312нм.

С.Н. Щелкунов. Генетическая инженерия. Сибирское университетское изд-во. Новосибирск. 2004. 496 с.

Генетическая инженерия

конструирование in vitro функционально активных генетических структур (рекомбинантных ДНК),или иначе - создание искусственных генетических программ

 

 

 

 

Генная инженерия

Клеточная инженерия

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

(in vitro)

 

 

(in vivo)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Возможности генной

инженерии

1.Можно скрещивать индивидуальные гены видов, стоящих на разных ступенях эволюции. В основе рекомбинации гетерологичных ДНК in vitro лежит прием, позволяющий с помощью рестриктаз подготовить молекулы для скрещивания, то есть разрезать разные ДНК с образованием одинаковых липких концов.

2.Можно управлять процессом рекомбинации, так как он происходит в пробирке и не защищен запрещающими механизмами организма.

3.Можно предсказать результат, т.к. отбирается потомство одной молекулы ДНК (молекулярное клонирование).

ГЕННАЯ ИНЖЕНЕРИЯ Технология рекомбинантных ДНК (рДНК)

Этапы генетического конструирования in vitro:

1.Получение нужного гена (выделение нужных генов из ДНК, химико- ферментативный синтез, ферментативный синтез гена на основе выделенной мРНК);

2.Встраивание полученного гена в генетический элемент, способный к репликации (вектор), например, получение рекомбинантной плазмиды;

3.Введение гена в составе вектора (например, рекомбинантной плазмиды) в организм-реципиент, например в клетки E.coli;

4.Клонирование в E.coli фрагмента ДНК;

5.Идентификацию (скрининг) и отбор клеток, которые приобрели нужный ген или гены.

6.Полученные гибридные ДНК подвергают дальнейшим перестройкам и затем вводят в реципиентные клетки, изменяя их генотип и фенотип.

Векторы для экспрессии и клонирования

Требования, предъявляемые к векторам:

Способность реплицироваться в клетке-хозяина (содержат ori репликации=Origin-точка начала репликации);

Способность включать чужеродные ДНК различной молекулярной массы без нарушения способности к репликации;

Легкость введения в клетку-хозяина;

Наличие генетического маркера селекции, обеспечивающего быструю селекцию клеток, содержащих вектор;

Наличие только 1 сайта рестрикции для каждой рестриктазы.

Легко извлекаются из клеток хозяина

Плазмидные векторы

С помощью плазмидных векторов можно клонировать фрагменты ДНК длиной до 10 т.п.н.

Получение рДНК для клонирования

Соседние файлы в предмете Микробиология