2 курс / Гистология / Морфологич_адаптация_внутренних_органов_к_поступлению_в_рганизм

Рис. 13. Селезёнка крысы, получавшей в течение двух месяцев кремний с питьевой водой. Метод Кросса. Микроскоп ЛЮМАМ-1.

Об. 4. Ок. 10:

1 – лимфоидный узелок с люминесцирующими клетками. 2 – лимфоидный узелок без люминесцирующих клеток. 3 – люминесцирующие клетки красной пульпы

Рис. 14. Лимфоидный узелок селезёнки крысы из контрольной группы. Метод Кросса. Микроскоп ЛЮМАМ-1. Об. 20. Ок. 10:

1 – центральная артериола, 2 – люминесцирующие клетки лимфоидного узелка, 3 – люминесцирующие клетки маргинального синуса, 4 – люминесцирующие клетки красной пульпы

Лимфоидные узелки в препаратах селезёнки, обработанных по методу Кросса, на фоне неравномерного зелёно-жёлто- оранжевого свечения красной пульпы отличаются зелёно-

120

изумрудным приглушённым свечением [1]. Маргинальные синусы визуализируются в виде слабо люминесцирующих ободков. В лимфоидных узелках можно различить желтоватозелёную эксцентрично расположенную узелковую артериолу.

Люминесцирующие клетки, содержащие гистамин, располагаются внутри лимфоидных узелков, в маргинальных синусах, в красной пульпе (рис. 15). Внутри лимфоидных узелков сосредоточены люминесцирующие гранулосодержащие клетки, в которых хорошо различимы отдельные яркие светлые гранулы (их цвет может варьировать от беловато-жёлтого до яркого лимон- но-жёлтого). Эти клетки могут быть округлыми, вытянутыми, иметь неправильную форму. Встречаются и лимфоидные узелки, которые не содержат люминесцирующих гранулосодержащих клеток.

Рис. 15. Селезёнка крысы, получавшей в течение двух месяцев кремний с питьевой водой. Метод Кросса. Микроскоп ЛЮМАМ-1. Об. 20. Ок. 10. На фоне жёлто-оранжевой красной пульпы различим лимфоидный узелок, окруженный маргинальным синусом. Около зонда (0,5) видны жёлтые гранулосодержащие клетки

Люминесцирующие гранулосодержащие клетки маргинальных синусов, окружающих лимфоидные узелки, занимают строго определённое положение вокруг узелков, образуя выраженные «цепочки». Эти померанцевого оттенка клетки вытянутоовальной формы, тусклые, светятся равномерно [1]. В красной пульпе люминесцирующие гранулосодержащие клетки большо-

121

го размера, неправильной, «лапчатой» формы со множественными отростками. Они светятся не так ярко, как люминесцирующие клетки лимфоидных узелков, цвет гранул в них жёлтооранжевый, наличествует выраженный померанцево-кирпичный оттенок [1]. По морфологическим характеристикам и данным литературы [8] мы относили их к макрофагам.

При обработке срезов селезёнки по методу Фалька – Хилларпа отличие люминесцентной морфологии селезёнки состояло, во-первых, в визуальном изменении яркости свечения гранулосодержащих клеток и их микроокружения, оттенок жёлтого также изменяется на более насыщенный. Во-вторых, вокруг узелковых артериол, которые светятся серо-зелёным, хорошо видны «ниточки» изумрудного цвета, – окружающие сосуды адренергические нервы, в которых различимы варикозные расширения (рис. 16).

Рис. 16. Узелковая артериола в лимфоидном узелке селезёнки. Метод Фалька – Хилларпа. Микроскоп ЛЮМАМ-1. Об. 20. Ок. 10. Над зондом (0,5) визуализируется серо-зелёная узелковая артериола, окруженная изумрудным адренергическим нервным волокном, в котором различимы варикозные расширения

Интенсивность люминесценции гистамина после двух месяцев поступления в организм кремния в содержащих его структурах селезёнки крыс приведена в табл. 28.

122

Таблица 28 Интенсивность люминесценции гистамина

в структурах селезёнки лабораторных крыс (М ± m, усл. ед.)

Наибольшая интенсивность люминесценции гистамина в люминесцирующих клетках внутри лимфоидных узелков и в люминесцирующих клетках красной пульпы сопоставима [1]. Есть некоторая тенденция к увеличению интенсивности люминесценции гистамина в микроокружении содержащих данный биоамин клеток для крыс, получавших с питьевой водой кремний. Поскольку гистаминсодержащие клетки селезёнки могут быть аминопоглощающими или аминопродуцирующими [2], имеют значение и абсолютные показатели интенсивности люминесценции гистамина, и относительные.

Соотношение интенсивности люминесценции гистамина между микроокружением гистаминсодержащих клеток и самими клетками в селезёнке крыс, не получавших и получавших кремний с питьевой водой, выраженное в процентах, составило в лимфоидном узелке 34,40 ± 3,12% и 46,29 ± 2,49% соответственно (p < 0,05), в красной пульпе – 46,94 ± 2,93% и 58,65 ± 2,11% соответственно (p < 0,001) [2]. Относительная интенсивность люминесценции гистамина в микроокружении люминесцирующих клеток в данных морфо-функциональных зонах увеличивается. В маргинальных синусах селезёнки крыс, не получавших и получавших кремний с питьевой водой, эти показатели сопоставимы и составляют 53,21 ± 4,42% и 61,76 ± 3,18% соответственно [1].

123

Гистамин индуцирует превращение незрелых дендритных клеток в эффекторные, которые посредством рецепторов H1 и H2 стимулируют созревание Т-хелперов Th2 типа [28]. Вероятно, некоторое увеличение интенсивности люминесценции гистамина в микроокружении всех содержащих его клеток в селезёнке связано не с тучными клетками, обнаруженными нами в малых количествах, но с макрофагами селезёнки [25; 27; 29]. В данном случае увеличение общей площади герминативных центров в лимфоидных узелках селезёнки крыс, получавших с питьевой водой кремний, из-за увеличения количества антигенпрезентирующих клеток в герминативных центрах и экспресии MНC-II на их поверхности под влиянием гистамина вполне имеет место быть, поскольку соединения кремния при поступлении в организм способны повышать уровень гистамина в клетках и тканях [36]. Кроме того, согласно литературным данным, митотическая активность лимфоцитов напрямую зависит от содержания в микроокружении гистамина [30]. Казалось бы, полученные нами результаты вступают в некоторое противоречие с известными фактами, между тем имеются работы, обращающие внимание на плейотропный эффект гистамина в реализации иммунного ответа [37].

Мы сочли нужным внести информацию о реакции структур селезёнки, содержащих серотонин и катехоловые амины, на поступление кремния в воде различной жесткости. В приведённых ниже таблицах приведены две дополнительные колонки с указанием на третью и четвёртую группы животных. Эти группы также входили в наш комплексный эксперимент (серия 2), в котором, напоминаем, первая группа получала воду без какихлибо добавок, вторая – с добавлением метасиликата натрия в концентрации 10 мг/л в пересчете на кремний, третья – с добавлением хлорида кальция в концентрации 235 мг/л в пересчете на кальций, четвёртая – с добавлением метасиликата натрия в концентрации 10 мг/л в пересчете на кремний и хлорида кальция в концентрации 235 мг/л в пересчете на кальций [7].

Интенсивность люминесценции серотонина в структурах селезёнки крыс, получавших и не получавших с питьевой водой кремний, представлена в табл. 29.

124

Таблица 29 Интенсивность люминесценции серотонина

в структурах селезёнки (М ± m, усл. ед.)

* СЗР с первой группой, р < 0,05.

Для животных всех групп наибольшая интенсивность люминесценции серотонина наблюдается в люминесцирующих гранулосодержащих клетках красной пульпы и лимфоидных узелков, что хорошо объясняется тем, что моноциты, макрофаги и дендритные клетки экспрессируют транспортный белок для серотонина, который способствует его перемещению из межклеточного пространства внутрь клетки [7].

Есть некоторые особенности реакции серотонинсодержащих клеток селезёнки на поступление кремния с питьевой водой, которые зависят от изолированного или сочетанного его поступления с солью кальция. Так, несколько увеличивается интенсивность люминесценции серотонина в микроокружении люминесцирующих гранулосодержащих клетках лимфоидных

125

узелков селезёнки под влиянием кальция. Люминесцирующие гранулосодержащие клетки маргинальных синусов реагируют на кремний увеличением интенсивности люминесценции серотонина, независимо от кальция, в то время как сам по себе кальций не изменяет интенсивность люминесценции серотонина в этих клетках.

Поступление с питьевой водой кальция, независимо от присутствия кремния, обнаруживает некоторую тенденцию к снижению интенсивности люминесценции серотонина в микроокружении гранулосодержащик клеток в маргинальных синусах селезёнки, а также в микроокружении люминесцирующих гранулосодержащих клеток красной пульпы. Интенсивность люминесценции серотонина резко снижается в красной пульпе селезёнки крыс, получавших питьевую воду с добавлением кальция [7].

Некоторые авторы утверждают, что на альвеолярных макрофагах есть 5-HT2C, который ответственен за возрастание уровня внутриклеточного кальция, причём степень экспрессии этого рецептора меняется в зависимости от функции клетки [40]. Серотонин непосредственно влияет на поступление кальция в клетки нервной системы мышей, уменьшая поступление кальция в клетку, при этом снижается и поступление калия, которое является кальцийзависимым [13].

Относительная интенсивность люминесценции серотонина в селезёнке представлена в табл. 30.

Таблица 30 Соотношение интенсивности люминесценции серотонина

в микроокружении к интенсивности люминесценции его в серотонинсодержащих клетках (М ± m)

* СЗР с первой группой, р < 0,05.

126

По данным табл. 30, повышение концентрации в питьевой воде и кремния, и кальция снижает показатель соотношения интенсивности люминесценции серотонина между микроокружением серотонинсодержащих клеток и содержащими его клетками маргинальных синусов и в красной пульпе.

Таким образом, поступление с питьевой водой кремния в течение двух месяцев оказывает более выраженное влияние на серотонинсодержащие клетки красной пульпы и маргинальных синусов селезёнки лабораторных крыс в дополнительном присутствии в питьевой воде солей кальция [8].

Усиление воздействия водорастворимого кремния в зависимости от повышения содержания в воде кальция по отношению к серотонинсодержащим клеткам наблюдалось нами в клубочковой и пучковой зонах коры надпочечников и в эпителии щитовидной железы лабораторных крыс, где интенсивность люминесценции серотонина в клетках при поступлении с водой кремния в концентрации 10 мг/л уменьшается обратно пропорционально показателям жесткости воды [8].

При поступлении в организм различных соединений кремния, в том числе и водорастворимых, в первое время происходят активация макрофагов и усиление их фагоцитарной активности, которое впоследствии сменяется недостаточностью этой функции. Серотонин играет большую роль в организации функций макрофагов, это обусловлено его способностью ингибировать внутриклеточные процессы свободно-радикального окисления [8].

Макрофаги экспрессируют различные серотониновые рецепторы, и это зависит от их функциональной активности. Так, М2 поляризованные макрофаги, которые синтезируют противовоспалительные цитокины, в отличие от М1-макрофагов (это активированные макрофаги, которые синтезируют провоспалительные цитокины), экспрессируют преимущественно HTR2B и HTR7 [41]. Имеют место сведения, что под действием серотонина М1-макрофаги трансформируются в М2-макрофаги [6]. Также было показано, что серотонин обнаруживает сходные эффекты по отношению к макрофагам человека и лабораторных животных – он подавляет их способность к фагоцитозу. Немало-

127

важно, что серотонин способен угнетать способность макрофагов и к эффероцитозу – фагоцитозу апоптозных клеток [35].

Интенсивность люминесценции катехоловых аминов в структурах селезёнки крыс, получавших и не получавших с питьевой водой кремний, представлена в табл. 31.

Таблица 31 Интенсивность люминесценции катехоловых аминов

в структурах селезёнки (М ± m, усл. ед.)

* СЗР с первой группой, р < 0,05.

Для крыс всех четырёх групп наибольшая интенсивность люминесценции катехоловых аминов наблюдается в люминесцирующих гранулосодержащих клетках лимфоидных узелков, несколько меньше содержание биоамина в макрофагах красной пульпы.

128

Есть некоторые особенности реакции клеток селезёнки, содержащих катехоловые амины, на поступление кальция с питьевой водой, которые зависят от изолированного или совместного его поступления с солью кремния. Люминесцирующие гранулосодержащие клетки маргинальных синусов реагируют на кальций увеличением интенсивности люминесценции катехоловых аминов, независимо от кремния, в то время как сам по себе кремний не изменяет интенсивность люминесценции серотонина в этих клетках.

Поступление с питьевой водой кальция и кремния статистически значимо снижает интенсивность люминесценции катехоловых аминов в микроокружении люминесцирующих гранулосодержащих клеток красной пульпы. Интенсивность люминесценции катехоловых аминов в периартериолярной зоне при этом резко снижается.

Относительная интенсивность люминесценции катехоловых аминов приведена в табл. 32.

Таблица 32 Соотношение интенсивности люминесценции катехоловых аминов в микроокружении к интенсивности люминесценции

его в катехоламинсодержащих клетках (М ± m)

* СЗР с первой группой, р < 0,05.

По данным табл. 32, повышение концентрации в питьевой воде только кремния увеличивает показатель соотношения интенсивности люминесценции катехоловых аминов между микроокружением катехоламинсодержащих клеток и интенсивностью его люминесценции в самих клетках изолированно в

129