Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

913

.pdf
Скачиваний:
2
Добавлен:
09.01.2024
Размер:
13.83 Mб
Скачать

 

 

 

 

 

Таблица 2

 

 

 

Динамика опухолевого роста

 

 

 

 

 

 

 

 

Не поддающийся

Летальный

Устойчивая

Эвтаназия

п/п

 

лечению

исход

ремиссия

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

41

13

15

29

 

 

 

 

 

 

 

В некоторых случаях не все владельцы готовы проводить лечение своих живот-

ных из-за различных причин. Кто-то подписывает отказ от лечения, а кто-то больше не приходит на приёмы. Данные можно наблюдать в таблице (табл. 3).

 

 

 

Таблица 3

 

Данные об отказе лечения

 

 

 

 

 

 

 

 

Нет информации о даль-

Отказ от лечения

 

нейшем лечении живот-

 

 

 

ного

 

 

 

 

1

3

 

5

 

 

 

 

В нижеприведенной диаграмме показано количество пациентов с новообразованиями кожи за каждый год.

-2019-2020 гг. – 85 пациентов.

-2020-2021 гг.– 101 пациент.

-2021-2022 гг.– 119 пациентов.

2019-2020

2020-2021

2021-2022

Пациенты с кожными ообразованиями

Рисунок ‒ Статистика новообразований по годам

Выводы. По результатам собственных исследований, проведенных на базе клиники «Надежда» г. Перми, можно утверждать, что с каждым годом количество животных с опухолями кожи увеличивается. За 2019‒2020 год зарегистрировано 85 (27 %), 2020‒2021 год – 101 (33 %), 2021‒2022 год – 119 (39 %) животных с кожными новообразованиями. Исходя из литературных источников, чаще всего склонны к образованию опухолей кожи возрастные и некастрированные собаки и кошки. По

251

статистике, подведенной нами, можно сказать, что данное утверждение верно, так как новообразования больше выявлены у животных старше 8 лет (55 %), либо приближенно к этому возрасту, а также всего 91 (29 %) пациент является кастрированным, тогда как 214 (70 %) животных не кастрированы.

Вид животного тоже имеет немалое значение, так, например, гистиоцитома чаще возникает у собак (16), у кошек она появляется намного реже (1). Но есл и рассматривать общее количество животных (305), то собак (169) и кошек (136), у кот о- рых обнаружили кожные опухоли, примерно одинаковое количество.

Следует заметить, что пол животного тоже имеет значение. Так, в нашем исследовании самки, которых 177 (58 %), более подвержены возникновению новообразований кожи, чем самцы, которых 128 (41 %).

По подведенной статистике можно наблюдать, что доброкачественных опухолей (63 %) практически в 2 раза больше, чем злокачественных (36 %).

Часто опухолевые процессы сопутствуются летальными исходами и тем, что лечению уже не поддаются. Так, в наших исследованиях с 2019 по 2022 год были 41 пациент, не поддающихся лечению, 13 летальных исходов и проведено 29 эвтаназий, но есть и пациенты, которые подвергаются устойчивой ремиссии.

Данная статистика не является полностью достоверной, так как некоторые владельцы мелких домашних животных по разным причинам не хотят продолжать лечение своих питомцев, поэтому количество заболевших может быть увеличено. Так, в нашей статистике о 5 пациентах нет информации о дальнейшем лечении, так как владельцы больше не приходили, и 3 отказались от лечения.

Новообразования кожи — это большая группа среди опухолей собак и кошек, в связи с чем требует особого внимания и своевременного обращения владельцев животных к ветеринарным врачам. Диагностика таких кожных заболеваний у животных должна проводиться на начальных стадиях, для того чтобы подобрать правильное лечение, и благодаря этому прогноз будет наиболее благоприятный.

Рекомендации. Важно вести и каждый год обновлять статистику пациентов с кожными новообразованиями мелких домашних животных в каждой клинике г. Перми для того, чтобы владельцы чаще приводили своих питомцев на приемы для предотвращения увеличения количества заболеваемости кожи.

Cписок литературы

1.Васильев, Р.М. Болезни кожи у собак (Диагностика и лечение): диссертация кандидата ветеринарных наук/ Р.М. Васильев. - СПбГАВМ, 1999. - С. 160.

2.Митрохина, Н.В. Клинико-морфологическая характеристика опухолей кожи мелких домашних животных / Н.В. Митрохина // VetPharma. – 2017. – № 1. – C. 81-82.

3.Морфологическая оценка новообразований кожи у собак при разных способах лечения, диссертация кандидата биологических наук:16.00.02. ‒ 2009. ‒ С.-100.

4.Скосырских, Л.Н. Диагностика заболеваний кожи / Л.Н. Скосырских, Коротаева О.А. // Сборник научных трудов молодых ученых. - Тюмень, 2004. – С. 74-76.

5.Чегодаева, М.Г. Международный научно-исследовательский журнал / М.Г. Чегодаева, Н.А. Татарникова - 2013. - № 3.- С. 45.

252

УДК 619:616.3:636.084:636.2

ИЗМЕНЕНИЕ РУБЦОВОЙ МИКРОФЛОРЫ У ДОЙНЫХ КОРОВ С АЛКАЛОЗОМ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ «КЕТОСТОП-ЭЛ»

Н.Б. Никулина

ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ, г. Пермь, Россия

E-mail: uralsray114@yandex.ru

Аннотация. Установлено, что при развитии алкалоза у дойных коров наблюдали изменения рН рубцового содержимого, снижение количества крупных инфузорий и увеличение мелких, средних форм, подвижность которых оценивалась на 3‒4 балла, что привело к нарушению процессов рубцового пищеварения. После применения кормовой добавки «Кетостоп-ЭЛ» в течение 28 дней рН рубцового содержимого снизился до физиологической нормы, регистрировали нормализацию качественного и количественного состава микрофлоры.

Ключевые слова: рубцовая микрофлора, коровы, метаболический алкалоз.

Постановка проблемы. В настоящее время приоритетной задачей сельскохозяйственного производства является обеспечение населения нашей страны качественными продуктами питания, а именно молоком и мясом [2, 3, 5, 7]. Как показано в исследованиях ряда авторов, «рентабельность сельскохозяйственных предприятий, занимающихся производством молочной продукции, в первую очередь зависит от объемов получаемого молока и его качества, что обусловлено генетическим потенциалом племенных животных» [1, 4].

В связи с этим нормированное кормление без ущерба рубцовой микрофлоре, обеспечение организма животных основными питательными веществами, а также поддержание всех физиологических процессов будет способствовать повышению репродуктивной функции и продуктивности коров, а также рождению здорового молодняка

[1, 4, 6, 8].

По данным некоторых авторов, «в молочном скотоводстве в настоящее время широко используются различные премиксы, биологически активные вещества и кормовые добавки. Их действие направлено на коррекцию метаболических процессов с целью повышения резистентности организма животных, воспроизводительной функции и увеличения молочной продуктивности» [2, 4, 5, 8].

Цель настоящей работы ‒ изучение изменений рубцовой микрофлоры у дойных коров с алкалозом при использовании кормовой добавки «Кетостоп-ЭЛ».

Материалы и методы. Исследования проводились в СПК «Колхоз имени Чапаева» Кунгурского района Пермского края на дойных коровах черно-пестрой породы в первую фазу лактации, с живой массой 450‒500 кг, в возрасте 3‒6-й лактации. Контрольную группу образовали здоровые животные, опытную ‒ коровы с клиническими признаками алкалоза. Кормовую добавку «Кетостоп-ЭЛ» (ООО «ЭЛЕСТ», Россия) вносили в рацион животных ежедневно, начиная с первого дня новотельного периода, в течение 28 дней из расчета 300 г на голову.

253

Увсех животных использовалась круглогодовая стойловая система содержания.

Вхозяйстве применяли базовый рацион, в состав которого входили силос, сенаж, комбикорм, жмых и кормовая соль.

Проводили забор содержимого рубца до утреннего кормления при помощи пищеводного зонда. рН рубцового содержимого определяли портативным рН-метром. В камере Горяева подсчитывали количество инфузорий. Подвижность микроорганизмов оценивали по пятибалльной системе.

Результаты исследований. Зоогигиенические параметры микроклимата в коровнике соответствовали нормативным требованиям. Отмечено, что состав рациона не соотвовал физиологическим потребностям коров, а именно по обменной энергии, сухому веществу, сырому протеину, сырому жиру, сырой клетчатке, сахару, кальцию и фосфору.

Уклинически здоровых коров рН рубцового содержимого находились на верхней границе допустимых значений. У животных опытной группы рН рубцового содержимого достигал 7,5‒7,6, что было выше физиологической нормы.

Цвет содержимого рубца у животных опытных групп колебался от темнозеленого до коричневого. Пробы имели специфический запах. Если у коров контрольной группы в рубцовом содержимом преобладали крупные формы инфузорий, то у животных опытной группы наблюдали изменения в количественном и качественном составе рубцовой микрофлоры: отмечали значительное снижение количества крупных инфузорий и увеличение мелких и средних форм. Их подвижность оценивалась на 3‒4 балла. Общий количественный состав у этих животных не достигает нижних границ референсных значений (в среднем 237,0+55,2 тыс./мл инфузорий при норме 500‒1000 тыс./мл). Полученные результаты свидетельствовали о нарушении процессов пищеварения у животных опытных групп.

После завершения опыта мы наблюдали изменения в составе микробной микрофлоры рубца у коров опытной группы. рН рубцового содержимого снизился до физиологической нормы (7,0). Обнаружено увеличение количества крупных инфузорий и уменьшение мелких и средних форм. Подвижность клеток оценивалась на 5 баллов. Общий количественный состав у этих животных увеличился и составил в среднем 670 + 45,2 тыс./мл. У коров с признаками дисфункции желудочно-кишечного тракта после применения добавки число инфузорий увеличилось до 394 тыс./мл. Полученные данные свидетельствовали об улучшении условий существования микроорганизмов.

Как известно, в процессах пищеварения микробиота рубца выполняет сложную и многогранную функцию. В ее состав входят грибы, инфузории и бактерии, которые трансформируют корма в структурные элементы собственного тела [4, 5, 7].

Некоторые исследователи, такие как Ю.Н. Алехин, А.Ю. Лебедева [1], в своей работе отмечали, что «при возникновении алкалоза рубца в рубцовом содержимом изменяется видовой состав микроорганизмов. Так, повышается доля инфузорий рода Diplodinium, снижается количество представителей рода Entodinium, исчезают особи рода Ophryoscolex».

Изменение рН рубцового содержимого приводит к гибели микроорганизмов, появлению токсических продуктов обмена и нарушению функционирования органов же- лудочно-кишечного тракта, о чем свидетельствовало ухудшение аппетита и клинического состояния коров опытной группы.

Включение в рацион животных добавки способствовало нормализации микробиоты рубца до величин клинически здоровых животных. Изменение состояния рубцо-

254

вой микрофлоры у коров можно объяснить тем, что «Кетостоп-ЭЛ» является комплексной добавкой. Пропиленгликоль, входящий в состав кормовой добавки, является источником эндогенной глюкозы и устраняет причины энергодефицита у животных. Кроме пропиленгликоля, она содержит пропионат и янтарную кислоту, которые восстанавливают функцию печени и уровень глюкозы в крови. Пищевые волокна способствуют повышению количества слюны, которая играет роль буферной системы и, как следствие этого, уменьшают рН содержимого рубца, устраняя причины развития алкалоза. Органические кислоты используются рубцовой микрофлорой для роста и развития, что приводит к увеличению образования белка в рубце. Кроме того, добавка содержит целиолиты, которые играют важную роль в детоксикации организма и уменьшении уровня аммиака в организме.

Выводы. Неполноценное кормление, преобладание в рационе коров протеина, недостаток сухого вещества и клетчатки способствовали возникновению алкалоза, что привело к изменению популяционного состава микробиоты и нарушению процессов рубцового пищеварения. Включение в рацион животных кормовой добавки «КетостопЭЛ» в течение 28 дней сопровождалось нормализацией качественного и количественного состава микрофлоры, о чем свидетельствовало уменьшение рН рубцового содержимого и одновременное повышение количества инфузорий и их подвижности. Следовательно, рационы для дойных коров при развитии алкалоза должно быть обогащены достаточным количеством сена хорошего качества, что будет способствовать увеличению количества вырабатываемой слюны как буферной системы, а также должны включать комплексные кормовые добавки для нивелирования неполноценности рационов.

Список литературы

1.Алехин, Ю. Н. Функциональные и метаболические параметры рубца при моделировании кислотности в его полости у коров / Ю. Н. Алехин, А. Ю. Лебедева // Наука России: Цели

изадачи : сборник научных трудов по материалам XXVI международной научной конференции, Екатеринбург, 10 апреля 2021 года. – Екатеринбург: Научно-издательский центр «Л- Журнал», 2021. – С. 30-36.

2.Ресурсосберегающие кормовые добавки для крупного рогатого скота / Ю. А. Балджи, Ю. Н. Шейко, В. В. Поляков, С. П. Сейденова // Вестник мясного скотоводства. – 2016. –

№ 2(94). – С. 59-63.

3.Состояние обмена веществ у высокопродуктивных коров, его коррекция и профилактика / А. Я. Батраков, А. В. Яшин, Т. К. Донская, С. В. Винникова // Ветеринария. – 2017. – № 7.

– С. 43-46.

4.Гертман, А. М. Ацидоз рубца как фактор, сдерживающий молочную продуктивность / А. М. Гертман, Т. С. Кирсанова, А. Ю. Федин // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – 2010. – Т. 203. – С. 83-87.

5.Метаболический ацидоз у высокопродуктивных коров: причины, последствия, профилактика / А. А. Евглевский, В. Н. Скира, Е. П. Евглевская [и др.] // Ветеринария. – 2017. – № 5. – С. 45-48.

6.Изучение рубцовой микрофлоры крупного рогатого скота / И. Р. Хамидуллин, А. К. Галиуллин, Т. М. Закиров [и др.] // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – 2015. – Т. 223. – С. 218-221.

7.Diagnosis of hepatopathy in Holstein cattle with metabolic disorders / I. I. Kalugniy, D. S. Markova, A. V. Yashin [et al.] // IOP conference series: earth and environmental science : Agriculture, field cultivation, animal husbandry, forestry and agricultural products Сер. 2, Smolensk, 25 января 2021 года. – Smolensk, 2021. – P. 022029.

255

8. Wathes, D.C. Associations between lipid metabolism and fertility in the dairy cow / D. C. Wathes, A. M. Clempson, G. E. Pollott // Reprod. Fertil. Dev. – 2012. – Vol. 25 (1). – Pр. 48–61.

УДК 619:616:636.5

РОЛЬ КОРТИКОСТЕРОНА В РЕГУЛЯЦИИ ПУЛА ЛЕЙКОЦИТОВ В КРОВИ КУР-НЕСУШЕК ПРИ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОМ СТРЕССЕ

Л.Н. Сайфутдинова, А.О.Дерхо

ФГБОУ ВО ЮУрГАУ, г. Троицк Челябинской обл., Россия Е-mail: kaf.himec@sursau.ru

Аннотация. Дана оценка влияния технологического стресс-фактора на уровень кортикостерона в крови кур и изменчивость пула лейкоцитов. Установлено, что величина плотности посадки птиц в клетке влияет на секреторную активность надпочечников и уровень кортикостерона в крови, а также характер изменений лимфоцитов и гетерофилов.

Ключевые слова: кортикостерон, куры, технологический стресс-фактор.

ВРоссии одной из приоритетных отраслей животноводства является птицеводство, обеспечивающее население нашей страны продуктами питания, содержащими легко усваиваемые и полноценные белки.

Входе промышленной эксплуатации птицы нередко подвергаются воздействию различных хронических технологических стрессоров. Это отражается не только на их продуктивных качествах, но уровне здоровья [3, 4, 9]. Так, одним из наиболее часто нарушаемых в условиях птицефабрик параметров является плотность посадки курнесушек в клетке [7, 8], увеличение которой сопровождается стрессовым воздействием на организм. Соответственно, это приводит к активации гипоталамо-гипофизарно- надпочечниковой оси (ГГН). По данным [5, 6], в организме птиц степень активации ГГН соответствует уровню секреции надпочечниками кортикостерона, который регулирует не только мобилизацию глюкозы и энергии, но и иммунореактивность организма. В частности, иммунологические эффекты кортикостерона в организме птиц в первую очередь реализуются за счет формирования лейкоцитарного состава крови [1, 2], так как гормон влияет на экспрессию проитвовоспалительных сигналов в периферических гетерофилах, лимфоцитах и моноцитах, определяя как их выход в кровоток из органов кроветворения, так и рекрутирование в ткани [10, 11].

Всвязи с этим целью нашей работы явилась оценка секреторной активности надпочечников в организме кур-несушек в зависимости от силы влияния технологического стресс-фактора, а также эффектов кортикостерона на пул периферических лейкоцитов.

Материалы и методы. Работа выполнена в 2018‒2022 гг. на поголовье курнесушек кросса Ломанн ЛСЛ-классик, принадлежащих ПАО «Челябинская птицефабрика», в условиях их клеточного содержания. Модель технологического стресса предусматривала увеличение поголовья птиц в клетке в 1,5 и 2 раза по сравнению с рекомендуемой нормой (n=8). Изменение плотности посадки сопровождалось соответствующим увеличением фронта кормления и поения.

256

Материалом исследований служила кровь, забор которой проводили из подкрыльцовой вены. С этой целью использовали вакуумный метод. Кровь брали до начала эксперимента (утром до кормления), а затем через 2, 4 и 24 часа после изменения величины технологического фактора. Образцы крови использовали для определения: 1) лейкоцитарного состава на гематологическом анализаторе МЕК 6510 (Япония); 2) концентрации кортикостерона иммуноферментным методом при помощи набора реактивов «ELISA» (Германия).

Для оценки влияния кортикостерона на лейкоцитарный состав крови птиц рассчитывали интегральный индекс гетерофилов, лимфоцитов и кортикостерона (ИИГЛК,

усл. ед.) по формуле

 

, где Лим – количество лимфоцитов в кро-

 

ви,109/л; Г – количество гетерофилов в крови, 109/л; К – концентрация кортикостерона в плазме крови, нмоль/л [5, 6].

Статистическую обработку данных выполнили в программе «Microsoft Excel 2010». Результаты исследований. В гомеостатических условиях продукция кортико-

стерона происходит по циркадному колебательному типу, то есть увеличивается во время активной фазы и снижается во время пассивной. Этот принцип секреции гормона необходим для поддержания физиологических функций (например, гомеостатического уровня АКТГ) [11]. При этом колебания уровня кортикостерона в крови птиц были незначительны, что видно из данных контрольной группы (рис. 1). Они варьировались в границах 26,00 – 32,00 нмоль/л.

200

150

100

 

 

 

 

3 группа

50

 

 

 

2 группа

 

 

 

0

 

 

 

1 группа (контроль)

 

фон

ч/з 2 ч

ч/з 4 часа ч/з 24 часа

 

 

 

Рисунок 1 – Кортикостерон (нмоль/л) и его изменчивость в крови кур

Однако в условиях развития стресс-реакции размах изменений концентрации гормона в крови кур был значительно увеличен.

Во второй опытной группе при инициации стресса путем увеличения по плотности посадки в 1,50 раза по сравнению с нормативными требованиями уровень кортикостерона возрастал (см. рис. 1). Наибольшее значение соответствовало контрольной точке «через 4 часа» после стрессовой нагрузки. При этом в ходе развития стрессовой реакции его концентрация варьировалась в пределах 41,00‒95,00 нмоль/л. При увеличении плотности посадки птиц в 2,00 раза (3 группа) в ходе всего периода наблюдений выявлялся в крови кур высокий уровень кортикостерона, варьируясь в пределах

116,00‒127,00 нмоль/л.

257

Как известно, в ходе развития стрессовой реакции в кровотоке птиц наибольшей изменчивостью из лейкоцитов характеризуются лимфоциты и гетерофилы [1, 10]. При этом степень их сдвигов эквивалентна силе воздействия стрессора и адаптационным возможностям организма кур [1, 6, 7]. Поэтому мы оценили влияние кортикостерона на вариабельность данных клеток, рассчитав величину интегрального индекса гетеро- филов-лимфоцитов и кортикостерона (рис. 2).

В контрольной группе значение ИИГЛК колебалось в интервале 17,98‒18,92 усл. ед., отражая однотипность выраженности биологических эффектов кортикостерона в отношении гетерофилов и лимфоцитов, регулирующего их миграционную активность в организме кур.

150

100

3 группа

50

 

 

 

2 группа

 

 

 

 

 

 

 

0

 

 

 

1 группа (контроль)

 

фон

ч/з 2 ч

ч/з 4 часа ч/з 24 часа

 

 

 

Рисунок 2 – Динамика ИИГЛК (усл. ед) в ходе стресс-реакции

Во второй группе величина ИИГЛК на фоне стрессирования птиц колебалась в пределах 38,85‒98,40 усл. ед., имея максимум в точке «через 4 часа». Значит, кортикостерон, проявляя свои свойства по отношению к лейкоцитарным клеткам, определял уменьшение в кровотоке кур лимфоцитов за счет их рекрутирования в ткани и увеличение гетерофилов за счет их выброса из органов кроветворения в кровоток. Поэтому можно утверждать, что в данный срок эксперимента технологический стресс-фактор оказывал наибольшее воздействие на организм птиц.

В третьей группе значение ИИГЛК в ходе стресс-реакции варьировалось в границах 105,17‒136,16 усл.ед. (см. рис. 2). При этом уровень параметра планомерно увеличивался в ходе периода исследований, достигая максимума в контрольной точке «через 24 часа». Следовательно, уровень изменения технологического параметра не был адекватен адаптационным возможностям организма птиц. Это, во-первых, поддерживало высокий уровень секреторной активности надпочечников (рис. 1) и, во-вторых, способствовало проявлению кортикостероном иммуносупрессивных свойств [5, 6, 7].

Выводы. Таким образом, технологический параметр – плотность посадки птиц в клетке, является стресс-фактором для организма кур-несушек, так как вызывает активацию ГГН, стимулируя секреторную активность надпочечников и повышая концентрацию кортикостерона в крови. Реализация биологических свойств гормона включает контроль за количеством лимфоцитов и гетерофилов в крови птиц. При этом выраженность свойств гормона зависит от силы воздействия стресс-фактора и активации гипо- таламо-гипофизарно-надпочечниковой оси. Увеличение технологического параметра в 2 раза, по сравнению с нормативными требованиями, не соответствует адаптационным возможностям птиц.

258

Список литературы

1.Донник, И.М. Клетки крови как индикатор активности стресс-реакций в организме цыплят / И.М. Донник, М.А. Дерхо, С.Ю. Харлап // Аграрный вестник Урала. − 2015. − № 5. − С. 68-71.

2.Джапаров, Е.К. Кортизол и его взаимосвязи с лейкоцитами в организме хряковпроизводителей / Е.К. Джапаров, М.А. Дерхо // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. − 2019. − Т. 239. − № 3. −С. 110-116.

3.Забудский, Ю.И. Проблемы адаптации в птицеводстве / Ю.И. Забудский // Сельскохозяйственная биология. − 2002. − № 6. − С. 80-85.

4.Кавтарашвили, А.Ш. Физиология и продуктивность птицы при стрессе / А.Ш. Кавтарашвили, Т.Н. Колокольникова // Сельскохозяйственная биология. − 2010. − №4. − С. 24-37.

5.Колесник, Е.А. Об участии гипофизарно-адренокортикальных гормонов в регуляции клеточного пула крови у цыплят-бройлеров // Е.А. Колесник, М.А. Дерхо // Проблемы биологии продуктивных животных. − 2018. − № 1. − С. 64-74.

6.Колесник, Е.A. О биофизических основах физиологических адаптации раннего онтогенеза у теплокровных животных в модели организма бройлерных кур / Е.А. Колесник, М.А. Дерхо // Эколого-физиологические проблемы адаптации: материалы ХVIII Всерос. симпозиума

смежд. участием. Москва: РУДН, − 2019. − С. 113-114.

7.Сайфутдинова, Л.Н. Оценка биологических связей кортикостерона и кортизола в организме кур при стрессе / Л.Н. Сайфутдинова, М.А. Дерхо // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. − 2021. − Т. 246, № 2. − С. 187-193.

8.Сайфутдинова, Л.Н. Лейкоциты и их информативность в оценке напряженности стресс-реакции у кур-несушек / Л.Н. Сайфутдинова, М.А. Дерхо // Известия ОГАУ. − 2019. − № 1(75). − С. 136-139.

9.Сурай, П.Ф. Физиологические механизмы развития теплового стресса в птицеводстве / П.Ф. Сурай, Т.И. Фотина // Качество и безопасность. − 2013. − № 6. − С. 54-60.

10.Харлап, С.Ю. Особенности лейкограммы цыплят в ходе развития стресс-реакции при моделированном стрессе / С.Ю. Харлап, М.А. Дерхо, Т.И. Середа // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. − 2015. − № 2 (52). − С. 103-105.

11.Niraula, A. Corticosterone Production during Repeated Social Defeat Causes Monocyte Mobilization from the Bone Marrow, Glucocorticoid Resistance, and Neurovascular Adhesion Molecule Expression / A. Niraula, Y. Wang, J.P. Godbout // J. Neurosci. – 2018. Vol. 38(9). – P. 2328-2340.

УДК 619:614.3:637.4

ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНАЯ ЭКСПЕРТИЗА КУРИНЫХ ЯИЦ ПРОИЗВОДСТВА ПТИЦЕФАБРИК «КОМСОМОЛЬСКАЯ», «ЧАЙКОВСКАЯ» И «ВАРАКСИНО»

Н.А. Татарникова1, К.А. Сидорова2, О.В. Новикова1, А.В.Новиков3, Д.А.Негодных1,

1 ФГБОУ ВО Пермский ГАТУ, г. Пермь, Россия

E-mail: tatarnikova.N.A@yandex.ru; kochetovaox@yandex.ru; nda0383n@yandex.ru

2ФГБОУ ВО ГАУ Северного Зауралья, г. Тюмень, Россия

E-mail: sidorova.clavdija@yandex.ru

3ФКОУ ВО «Пермский институт ФСИН России», г. Пермь, Россия

Email: nav-1978@yandex.ru

Аннотация. Яйцо – распространённый продукт питания человека. В ветеринарии известны сотни различных заболеваний птиц. Нередко встречаются болезни, общие для

259

птиц и человека. Поэтому при взаимодействии с предположительно заразным продуктом необходимо проявлять большую осторожность во избежание собственного заражения.

Ключевые слова: яйцо, ГОСТ, КМАФАнМ, ПГБК, птицефабрика, желток, белок.

Постановка проблемы. Производство пищевых куриных яиц и мяса птицы обеспечивает более 30 % потребности населения в натуральных продуктах питания животного происхождения. Полноценный белок, оптимальный жирно-кислотный, витаминный и минеральный состав куриных яиц способствуют постоянному наращиванию их производства и потребления [9].

Материалы и методы. Материалами исследования являются куриные яйца первой категории трёх птицефабрик: «Комсомольская» (АО «Птицефабрика «Комсомольская», Пермский край, Кунгурский район, п. Комсомольский), «Чайковская» ЗАО («Птицефабрика Чайковская», Пермский край, г. Чайковский, с. Фоки) и «Вараксино» (ООО «Птицефабрика «Варанкино», Удмуртская Республика, Завьяловский район, с. Вараксино), которые исследовали по органолептическим и микробиологическим показателям. В исследовании были использованы куриные столовые яйца, срок хранения которых при температуре от 0°С до 20°С составляет от 8 до 25 суток, яйца первой категории.

Рисунок 1 – Объекты исследования

Исследования проводились в бактериологическом отделе государственного бюджетного учреждения ветеринарии края «Пермский Ветеринарный Диагностический Центр» и на кафедре инфекционных болезней Пермского ГАТУ.

Куриное яйцо оценивалось методами органолептических, физических, химических показателей.

Результаты исследований. Определение органолептических показателей.

Чистоту и целостность скорлупы отобранных яиц проверяли визуально при ярком рассеянном свете.

На взгляд оценивали пятнистость поверхности, она может быть покрыта пятнами, полосками, точками, которые хорошо видны при овоскопии.

Запах яиц определялся после вскрытия тары. Примерно 20 см жидкого яичного продукта поместили в стеклянную тару с кипящей дистиллированной водой, перемешали и органолептически определяли запах продукта [5].

260

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]