3 курс / Общая хирургия и оперативная хирургия / Осенний семестр / Занятие 2. Асептика. Профилактика воздушно-капельной ин-фекции. Профилактика контактной и имплантацион-ной инфекции

Практическое занятие №2. Асептика. Профилактика воздушно-капельной инфекции Профилактика контактной и имплантационной инфекции

Цель занятия. Изучить источники и пути инфицирования. Изучить особенности устройства и организации работы операционного блока и перевязочных. Изучить мероприятия по профилактике воздушно-капельной инфекции. Изучить методы обработки рук хирурга, подготовки хирурга к хирургическому вмешательству, способы обработки операционного поля и используемые при этом антисептики. Научить и овладеть современными методами предстерилизационной обработки и стерилизации инструментария, шовного материала, операционного белья.

Студенты должны знать: Различные способы обработки рук хирурга, преимущества и недостатки каждого из способов, особенности их применения, этапы обработки рук хирурга и операционного поля, используемые для этой цели антисептики, их формы и концентрацию. Современные способы и средства стерилизации. Устройство для стерилизации и принципы их действия. Способы укладки биксов, стерилизации хирургических инструментов, белья, шовного материала, оборудования, способы контроля стерильности.

Студенты должны уметь: Выполнить обработку рук перед операцией по предложенному способу и с использованием различных химических антисептиков. Уметь обработать операционное поле по ФилончиковуГроссиху и Баккалу. Производить предстерилизационную подготовку инструментов и белья, укладывать биксы, изготавливать марлевые шарики, тампоны, салфетки, осуществлять контроль за стерильностью материала с помощью современных методов.

Асептика – это комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов (возбудителей инфекции) в рану или организм человека.

Рис. 1. Э. Бергман (1836-1907 гг.).

Основоположником асептики явился немецкий хирург Эрнст Бергман (рис. 1.), работавший ранее в России. В основе предложенного им асептического метода лежит принцип уничтожения микробной флоры на всех предметах, соприкасающихся с раной (т.е. их стерилизация), воздействием высокой температуры (кипячением, действие горячего пара и др.).

Антисептика – комплекс мероприятий, направленных на борьбу с инфекцией в организме человека, на предупреждение или ликвидацию инфекционно-воспалительного процесса.

Основоположник антисептики – английский хирург Джозеф Листер (рис. 2.), который впервые создал и применил систему мероприятий, направленных на борьбу с инфекцией в ране и организме человека. Основными компонентами этой системы были многослойная листеровская повязка, обработка рук, инструментов, стерилизация воздуха в операционной. Повязка состояла из шелка, пропитанного 5% раствором карболовой кислоты, поверх неё накладывали 8 слоёв марли, пропитанной тем же раствором с добавлением канифоли; повязку покрывали прорезиненной тканью или клеёнкой и фиксировали марле-

выми бинтами, пропитанными карболовой кислотой. Руки хирурга, инструменты, операционное поле, перевязочный и шовный материал обрабатывали 2-3% раствором карболовой кислоты. В операционной с помощью пульверизатора распыляли раствор карболовой кислоты до и во время вмешательства для стерилизации воздуха.

Рис. 2. Дж. Листер (1829-1912 гг.).

С современных позиций асептика и антисептика представляют единое целое в профилактике хирургической инфекции. Рассматривать их следует с точки зрения взаимоотношения источника инфекции, путей ее передачи и восприимчивости организма.

Под источником инфекции понимают места обитания, развития и размножения микроорганизмов. По отношению к организму больного возможны экзогенные (вне организма) и эндогенные (внутри организма) источники хирургической инфекции.

Основным источником экзогенной инфекции являются больные с гнойно-воспали- тельными заболеваниями, бациллоносители, реже – животные (схема 1).

Имплантационный

Схема 1. Экзогенное инфицирование.

От больных с гнойно-воспалительными заболеваниями микроорганизмы попадают во внешнюю среду (воздух, окружающие предметы, одежда и кожные покровы медицинского персонала) с гноем, слизью, мокротой и другими выделениями. При несоблюдении правил асептики микроорганизмы могут попасть в рану и вызвать гнойно-воспалительный процесс.

Микроорганизмы проникают в рану из внешней среды различными путями:

1.Воздушным (воздушно-капельным) – из окружающего воздуха, в котором находятся микроорганизмы;

2.Контактным – при соприкосновении с раной инфицированных предметов, инструментов, перевязочного материала, операционного белья, рук медицинского персонала;

3. Имплантационным - при оставлении в ране (или организме) на длительное время или постоянно различных предметов (шовного материала, костных фиксаторов, сосудистых протезов, сетчатых эндопротезов для герниопластики и других имплантатов), инфицированных при выполнении операции или вследствие нарушения правил стерилизации.

Животные как источник хирургической инфекции играют наибольшую роль при заражении сибирской язвой, столбняком и газовой гангреной. Заражение сибирской язвой возможно при контакте человека с больным или павшим от сибирской язвы животным, при разделке туш, обработке кожи, меха, употреблении в пищу мяса больных животных. С испражнениями животных в окружающую среду могут попасть возбудители столбняка и газовой гангрены. На окружающих предметах и в почве эти микроорганизмы находятся в виде спор. При случайных повреждениях они могут проникнуть в рану с землей, обрывками одежды, пылью и другими предметами и вызывать специфическое воспаление.

Источником эндогенного инфицирования являются хронические воспалительные процессы в организме (инфекционно-воспалительные заболевания кожи и подкожной клетчатки, зубов, миндалин, костей и пр.), а также микроорганизмы, находящиеся в зонах естественной вегетации микрофлоры в организме (желудочно-кишечный тракт, включая полость рта, воздухоносные, мочевыводящие пути и др.).

Пути инфицирования при эндогенной инфекции (схема 2):

1.Гематогенный ( с кровотоком);

2.Лимфогенный (с током лимфы);

3.Контактный (при попадании в рану во время операции гноя, экссудата, кишечного содержимого вследствие нарушения техники оперативного вмешательства или при переносе микрофлоры на инструментах, перчатках вследствие несоблюдения мер предосторожности).

Схема 2. Эндогенное инфицирование.

С помощью асептики ведется борьба с экзогенной инфекцией, методами антисептики – с эндогенной инфекцией. Для успешной профилактики инфекции необходимо, чтобы борьба велась на всех этапах (источник инфекции – пути инфицирования – организм) путем комбинации средств асептики и методов антисептики.

Для предупреждения инфицирования окружающей среды при наличии источника – больного с гнойно-воспалительным заболеванием – необходимы в первую очередь организационные мероприятия: лечение таких больных в специальных отделениях хирургической инфекции; выполнение операций и перевязок в отдельных («гнойных») операционных и перевязочных; наличие специального персонала для лечения больных и ухода за ними.

Борьба с микрофлорой на путях воздушного инфицирования.

Успех профилактики экзогенного инфицирования у хирургических больных возможен при условии комплексного подхода на всех этапах пребывания больного в стационаре, что достигается, прежде всего, правильной организацией его работы.

Хирургический стационар включает несколько основных функциональных подразделений: операционный блок, палаты хирургического отделения, перевязочные, процедурные и пр.

Вся работа хирургического стационара по профилактике экзогенной инфекции начинается с разделения больных на «чистых» и «гнойных». Больных с гнойно-воспалитель- ными хирургическими заболеваниями госпитализируют в гнойные отделения (отделения хирургической инфекции), которые полностью изолированы от чистых хирургических отделений. В них работает специальный персонал, имеются свои перевязочные, операционные и процедурные помещения. Гнойное отделение должно находиться в отдельном помещении. При наличии лишь одного хирургического отделения в нем выделяются специальные палаты для гнойных больных, которые располагаются в его отдельной части с отдельной перевязочной.

Вприемном отделении, где проводятся первичный осмотр и обследование поступивших, сразу же разделяют потоки больных на «чистых» и «гнойных». В приемном отделении выполняют санитарно-гигиеническую обработку, которая предусматривает мытье больных (гигиеническая ванна или душ) и их переодевание. При определенных условиях (педикулез, чесотка) проводят специальную обработку, а также дезинфекцию и дезинсекцию белья.

Вхирургическом отделении для поддержания санитарного режима проводится ежедневная влажная уборка с применением средств для дезинфекции и 1 раз в 3 дня – влажная уборка стен. Регулярное проветривание и использование кондиционеров позволяет снизить степень бактериальной обсемененности помещений отделения. Важное значение имеет санитарный режим для персонала: душ перед началом работы, сменные одежда и обувь, ношение колпаков. Важным средством профилактики является обследование персонала на бациллоносительство (мазки из носа, глотки) и изоляция сотрудников с простудными и гнойничковыми заболеваниями.

Операционный блок – это комплекс специальных помещений для выполнения операций и проведения обеспечивающих их мероприятий (рис. 3.). Операционный блок должен располагаться в отдельном помещении или крыле здания, соединенном коридором с хирургическими отделениями, или на отдельном этаже многоэтажного хирургического корпуса.

Рис. 3. Современная операционная.

Каждый член хирургической бригады, несмотря на специальную подготовку к операции, стерильное операционное белье, соблюдение режима работы, выделяет в окружающий воздух до 1500 микроорганизмов в минуту. За 1-1,5 часа работы одной хирургической бригады бактериальная загрязненность воздуха в операционной увеличивается на 100%. Допустимое количество микроорганизмов в 1 м3 воздуха операционной перед началом работы не должно превышать 500, во время операции – 1000. Поддерживать такой уровень удается с помощью специальных устройств системы вентиляции, режима работы и уборки операционной, дезинфекции воздуха и предметов.

Для обеспечения режима стерильности в операционном блоке выделяют специальные функциональные зоны.

1.Зона стерильного режима включает операционную, предоперационную и стерилизационную. В помещениях этой зоны производят: в операционной – непосредственно операции; в предоперационной – подготовку рук хирурга к операции; в стерилизационной – стерилизацию инструментов, которые понадобятся в ходе операции или используются повторно.

2.В зону строго режима входят такие помещения, как санпропускник, где происходит переодевание персонала в стерильную одежду, а также помещения для хранения хирургических инструментов и аппаратов, наркозной аппаратуры и медикаментов, кабинет переливания крови, помещения для дежурной бригады, старшей операционной сестры, санитарный узел для персонала операционного блока.

3.Зона ограниченного режима объединяет производственные помещения для обеспечения работы операционного блока: здесь находятся аппаратура для кондиционирования воздуха, вакуумные установки, установки для снабжения операционной кислородом

инаркотическими газами и пр.

4.В зоне общего режима находятся кабинеты заведующего, старшей медсестры, помещения для грязного белья и пр.

Режим работы операционного блока предусматривает ограничение его посещений; в зоне стерильного режима должны находиться только персонал, непосредственно участвующий в операции (хирурги и их ассистенты), операционные сестры, анестезиологи и анетезисты, операционная санитарка.

Стерильный режим в операционной достигается за счет предупреждения занесения сюда из других помещений микроорганизмов и их распространение. Специальное устройство операционного блока, использование стерильных шлюзов перед входом в операционную, подготовка больного к операции (мытье, смена белья и пр.), подготовка к операции персонала (обязательное переодевание, использование стерильного белья, надевание бахил, шапочек, масок, обработка рук) значительно ограничивают проникновение микроорганизмов в операционную.

Контроль за режимом стерильности операционного блока проводится периодически путем бактериологического исследования воздуха в операционной, смывов со стен, потолка, аппаратов и приборов. Материалы для посева берут 1 раз в месяц; еженедельно, кроме того, выборочно делают посев с рук работников оперблока для контроля стерильности.

Микроорганизмы, находящиеся в воздухе и на предметах, в основном фиксированы на частицах пыли. Поэтому тщательное удаление пыли, как и предупреждение проникновения ее в операционную, существенно уменьшают степень микробного загрязнения.

В операционной предусмотрены следующие виды уборки.

1.Предварительная уборка. Ежедневно утром перед началом операций влажной тряпкой протирают горизонтальные поверхности (пол, столы, подоконники, приборы и пр.), чтобы удалить всю пыль, осевшую за ночь на эти плоскости.

2.Текущая уборка. В процессе операции постоянно убирают все упавшие на пол предметы (салфетки, шарики, инструменты и пр.), вытирают пол, загрязненный кровью или другими жидкостями больного.

3.Послеоперационная уборка. В промежутке между операциями, когда больной вывезен из операционной, убирают белье, салфетки, инструменты; влажной салфеткой, смоченной раствором антисептика, протирают операционный стол и накрывают его чисто простыней; пол протирают влажной тряпкой.

4.Заключительная уборка. Ее производят ежедневно после окончания рабочего дня. Она включает влажную уборку с протиранием потолка, стен, подоконников, пола, всех предметов и аппаратуры с использованием дезинфицирующих растворов и последующим включением бактерицидных ламп.

5.Генеральная уборка. В конце рабочей недели потолок, стены, пол и все предметы

воперационной обрабатывают дезинфицирующим раствором. После этого проводят общую влажную уборку и включают бактерицидные ультрафиолетовые лампы.

Для обеззараживания воздуха и предметов, находящихся в операционной используют напольные (передвижные), настенные и потолочные бактерицидные ультрафиолетовые лампы различной мощности.

Кроме бактерицидных ламп, для обеззараживания воздуха в операционной могут быть использованы специальные озонирующие установки, а также аэрозоли бактерицидных веществ, распыляемые специальным аппаратом типа «Дезинфаль».

Предупреждение загрязнения воздуха в операционной достигается механической системой вентиляции, осуществляемой путем подачи воздуха с улицы или за счет его рециркуляции. Для выполнения некоторых вмешательств, требующих особых условий стерильности (трансплантация органов, требующая в последующем применения иммунодепрессивных средств, имплантация протезов, операции на сердце и пр.), используют операционные с ламинарным потоком стерильного кондиционированного воздуха. Количество микроорганизмов в таких операционных в десятки раз ниже, чем при обычной системе кондиционирования воздуха.

Внутрибольничная (госпитальная) инфекция.

Госпитальная (внутрибольничная, нозокомиальная) инфекция – это болезни или осложнения заболеваний, возникновение которых связано с инфицированием больных в стационаре.

Европейское бюро Всемирной организации здравоохранения дает следующее определение: «Внутрибольничная инфекция (больничная, госпитальная, внутригоспитальная, нозокомиальная) – любое клинически распознаваемое инфекционное заболевание, которое поражает больного в результате его поступления в больницу или обращения в нее за лечебной помощью, или сотрудников больницы вследствие их работы в данном учреждении, вне зависимости от появления симптомов заболевания во время или после пребывания в больнице».

Первичный источник инфекции в хирургическом стационаре - больные с гнойными заболеваниями.

Микроорганизмы через предметы, воздух, белье могут в хирургическом стационаре переходить от одного больного к другому. Периодическое наличие в стационаре источников инфекции, постоянное селективное давление антимикробных средств приводит к тому, что один из потенциальных возбудителей внутрибольничной инфекции приобретает признак, обеспечивающий ему преимущества в борьбе за источники питания и места обитания. Этот вид микроорганизмов интенсивно колонизирует все биотопы в стационаре (носоглотку, дыхательные пути, кишечник пациентов и персонала, предметы внешней среды стационара и пр.), вытесняя другую микрофлору, то есть происходит процесс становления и распространения госпитального штамма. В качестве нозокомиальной микрофлоры чаще встречаются стафилококк, кишечная палочка, протей, клебсиеллы, синегнойная палочка. Микробная флора при этом отличается высокой устойчивостью (резистентностью) к антибактериальным средствам.

В результате массивной контаминации организма пациента этой микрофлорой на фоне операционного стресса или недостаточной иммунобиологической защиты организма происходит миграция возбудителя из кишечника, дыхательных путей в кровеносное русло и развитие внутрибольничной инфекции, что проявляется клинически различными гнойными осложнениями. Инфицирование возможно также из экзогенных источников, куда госпитальная флора попала ранее. Возможно развитие массового заболевания (осложнения) – вспышка госпитальной инфекции.

Для борьбы с этой инфекцией важное значение имеют организационные мероприятия: строгий санитарный режим отделения; закрытие отделений для проведения тщательной санитарной обработки при вспышке инфекции; сокращение сроков до- и послеоперационного пребывания больных в стационаре; рациональная бактериальная терапия (смена противомикробных средств, бактериологический контроль за эффективностью терапии), использование комбинированных методов антисептики и пр.

Профилактика контактного и имплантационного инфицирования

Для предупреждения контактного инфицирования необходимо, чтобы было стерильным (т.е. свободным от инфекции) всё, что соприкасается с раной. Это достигается специальной обработкой операционного белья, перевязочного и шовного материала, перчаток, инструментов, обработкой рук хирурга и операционного поля.

Стерилизация – полное освобождение от микроорганизмов (в том числе и живых спор) всех предметов, растворов, материалов. Дезинфекция предусматривает уничтожение патогенной микрофлоры.

Стерилизация инструментов, перевязочного материала и белья включает следующие

этапы:

I – предстерилизационная подготовка материала; II – укладка и подготовка к стерилизации;

III – стерилизация;

IV – хранение стерильного материала.

Все эти этапы выполняются в соответствии с отраслевым стандартом «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения».

Стерилизация инструментов.

Этап I – предстерилизационная подготовка. Её цель – тщательная механическая очистка инструментария, шприцев, инъекционных игл и пр., удаление пирогенных веществ и вируса гепатита.

Бывшие в употреблении, но неинфицированные инструменты моют проточной водой щётками в отдельной раковине в течение 5 мин и затем на 15 – 20 мин замачивают в одном из специальных моющих растворов (комплекс пергидроля или 2,5% раствора перекиси водорода с моющим средством «Новость», «Астра"), подогретым до 500С. После замочки инструменты моют в том же растворе ершами, щётками, затем в течение 5 мин ополаскивают тёплой водой и в течение 1 мин прополаскивают в дистиллированной воде. После этого инструменты помещают в суховоздушный стерилизатор при температуре 850С для высушивания, после чего они готовы к стерилизации.

Инструменты, загрязненные гноем или кишечным содержимым, предварительно помещают в специальные емкости с 0,1% раствором диоцида или 5% раствором лизола на 30 мин. Затем в этом же растворе их моют ершами, щетками, ополаскивают проточной водой и опускают в один из моющих растворов, проводя дальнейшую обработку по описанной выше методике.

Инструменты после операции, проведенной у больного с анаэробной инфекцией, замачивают на 1 ч в специальном растворе, состоящем из 6% раствора перекиси водорода и 0,5% раствора моющего средства, затем моют щеткой в этом же растворе и кипятят 90 мин. Лишь после этого инструменты готовят к стерилизации так же, как неинфицированные

инструменты. Через 1 сутки (время для прорастания спор), их подвергают автоклавированию или кипячению (дробная стерилизация).

Пункционные инъекционные иглы после употребления промывают с помощью шприца теплой водой, а затем 1% раствором натрия гидрокарбоната; канал иглы прочищают мандреном, промывают 0,5% раствором нашатырного спирта и проточной водой. После этого иглу со вставленным мандреном кипятят в течение 30 мин в 2% растворе натрия гидрокарбоната, а затем через 8-12 ч - повторно в дистиллированной воде в течение 40 мин и высушивают, после чего канал иглы просушивают путем продувания эфиром или спиртом с помощью шприца.

Для контроля полноты удаления крови с предметов, прошедших предстерилизационную подготовку, используют бензидиновую пробу: на предмет наносят 3 капли 1% раствора бензидина и перекиси водорода. Появление сине-зеленой окраски указывает на следы крови, оставшейся на предметах. В этом случае необходима повторная обработка.

Этап II – укладка и подготовка к стерилизации. Для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помещают в металлические коробки, укладывая их вертикально в один слой.

Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в хлопчатобумажную ткань в виде пакета и выкладывают на металлический поднос или сетку.

Этап III – стерилизация. Стерилизация инструментов, игл, стеклянной посуды проводится в сухожаровых шкафах – стерилизаторах при температуре 1800C в течение 60 мин

(рис. 4.).

Рис. 4. Сухожаровый шкаф - стерилизатор.

Стерилизацию инструментов можно производить в паровом стерилизаторе (автоклаве). При давлении 2 атм (что соответствует температуре 132,90C) в течение 20 мин.

Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные. Метод стерилизации кипячением используют в небольших лечебных учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Инструменты кипятят в 2% растворе соды в течение 40 мин с момента закипания.

Режущие инструменты (скальпели, ножницы) при стерилизации обычными методами затупляются, поэтому ее проводят практически без термической обработки. После предстерилизационной подготовки инструменты погружают в 96% этиловый спирт на 30 мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих

инструментов в дистиллированной воде без соды в течение 10 мин, затем их помещают в 96% этиловый спирт на 30 мин.

В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов ни одним из указанных способов, используют метод обжигания. В металлический тазик или лоток наливают 15-20 мл спирта, укладывают несколько инструментов на дно и поджигают спирт. Метод недостаточно надежен, поэтому к нему прибегают в исключительных случаях.

Этап IV – хранение стерильного материала. Стерильный материал хранят в спе-

циальном помещении. Стерильность материала в биксах (если они не открывались) сохраняется в течение 48 ч.

Стерилизация шприцев, систем для трансфузии и изделий из резины (катетеров, дренажей, перчаток).

В современных условиях, как правило, используют шприцы, системы для трансфузии и изделия из резины (перчатки, катетеры, дренажи и пр.), стерилизованные в заводских условиях (разового пользования).

При необходимости стерилизация шприцев (в разобранном виде) и систем для трансфузии может производиться в сухожаровых шкафах или в паровом стерилизаторе. Основной метод стерилизации изделий из резины (дренажи, катетеры, перчатки) – автоклавирование. В исключительных случаях их подвергают кипячению в течение 15 мин.

Стерилизация инструментов и предметов, не подлежащих термической обра-

ботке.

Стерилизация инструментов и предметов, не подлежащих термической обработке (эндоскопы, торакоскопы, лапараскопы и пр.), осуществляют в специальном газовом стерилизаторе. Предметы для стерилизации помещают в герметичную стерилизационную камеру, которую заполняют окисью этилена. Время экспозиции – 16 ч при температуре 180С. Стерилизация может проводиться также смесью окиси этилена и бромида метилена при температуре 550С в течение 6 ч.

Стерилизация инструментов и оптических аппаратов может быть проведена в спиртовом растворе хлоргексидина и первомуре. При такой стерилизации инструменты и оптические приборы помещают в металлические коробки с крышками и заливают раствором (чтобы он полностью покрывал их).

Стерилизация перевязочного материала, операционного белья.

К перевязочному материалу относятся: марлевые шарики, салфетки, тампоны, турунды, бинты. К операционному белью относят халаты хирургические, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы. Материалом для их изготовления служат хлопчатобумажные ткани.

Этап I – предстерилизационная подготовка материала. Перевязочный материал готовят из марли, предварительно разрезанной на кусочки. Марлю складывают, подвертывая края внутрь, чтобы не было свободного края (для предотвращения осыпания волокон ткани). Для удобства подсчета расходуемого во время операции материала его укладывают перед стерилизацией определенным образом: шарики – в марлевые мешочки по 50-100 штук, салфетки – в связки по 10 штук. Халаты, простыни, пеленки, полотенца для стерилизации складывают в виде рулонов, чтобы их легко можно было развернуть при использовании.

Этап II – укладка и подготовка материала к стерилизации. Перевязочный мате-

риал и операционное белье укладывают в биксы (рис. 5.). Существуют следующие типы укладки биксов:

Универсальная укладка. При универсальной укладке в бикс помещают материал, предназначенный для одной небольшой типичной операции (например: аппендэктомия, грыжесечение и пр.).

Целенаправленная укладка. При этом виде укладки в бикс закладывают необходимый набор перевязочного материала и операционного белья, предназначенного для производства конкретной операции (например: бикс с материалом для резекции желудка, бикс с материалом для пульмонэктомии и пр.). Такую укладку обычно применяют для больших плановых операций.

Видовая укладка. При видовой укладке в бикс укладывают определенный вид перевязочного материала или белья (например: бикс с халатами, бикс с салфетками, бикс с шариками и пр.).

Этап III – стерилизация. Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в автоклаве в биксах с открытыми решетками в течение 20 мин при давлении 2 атм (температура 132,90С.).

Этап IV – хранение стерильного материала. По окончании стерилизации биксы вынимают, сразу закрывают решетки и переносят их на специальный стол для стерильного материала. Хранят бикса в шкафах в специальной комнате. Допустимый срок хранения перевязочного материала и белья, если бикс не вскрывался, - 48 ч с момента окончания стерилизации.

Рис. 5. Биксы Шиммельбуша.

В настоящее время также в качестве методов стерилизации используют такие современные способы как стерилизация озоном, ионизирующим, ультразвуковым и ультрафиолетовым излучением.

Стерилизация озоном. Этот метод основан на свойстве озона, как исключительно сильного окислителя, а также его способности создавать ультранизкую температуру в стерилизуемой среде (-1800С). Озон довольно легко окисляет аминокислоты (как свободные, так и входящие в состав белков), активно реагирует с нуклеиновыми кислотами и особенно с липидами, являющимися основными компонентами цитоплазматических мембран, что в совокупности с действием низких температур приводит к гибели микроорганизмов. Этот метод не требует расходных материалов и химически стойких дезинфектантов, подлежащих утилизации, не требует отмывки изделий или аэрации после стерилизационного цикла. Таким способом стерилизуют хирургические инструменты с микронной заточкой, эндоскопическое и лапароскопическое оборудование, катетеры, не выдерживающие температурной обработки воздухом или паром под давлением.