Государственное бюджетное образовательное учреждение

высшего профессионального образования

«КИРОВСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ МЕДИЦИНСКАЯ АКАДЕМИЯ»

Министерства здравоохранения Российской Федерации

Кафедра инфекционных болезней

Заведующая кафедрой д.м.н., профессор А.Л. Бондаренко

Методические указания для внеаудиторной работы студентов

3 Курса очно-заочной формы обучения факультета высшего сестринского образования к практическому занятию

по дисциплине «Эпидемиология»

направление подготовки «Сестринское дело»

Тема: «дезинфекция. Стерилизация»

Киров 2013 г.

Название темы: Дезинфекция. Стерилизация.

Значение темы: Возбудители инфекционных заболеваний длительное время сохраняются во внешней среде, поэтому знание методов их уничтожения на путях и факторах передачи необходимо для проведения профилактических мероприятий в ЛПУ и противоэпидемических мероприятий в очагах инфекционных заболеваний (способствует формированию компетенций: общекультурных – ОК-1, ОК-5; профессиональных – ПК-7, ПК-10).

Цель занятия: на основании знаний методов и средств дезинфекции, стерилизации уметь организовать профилактические и противоэпидемические мероприятия в ЛПУ (обеспечить инфекционную безопасность пациентам и персоналу) и инфекционный контроль.

Задачи: рассмотреть способы и методы дезинфекции, стерилизации, дератизации и дезинсекции; обучить методикам расчета приготовления рабочих растворов дезсредств; изучить камерные методы дезинфекции.

Студент должен знать:

До изучения темы (базисные знания):

1. Виды возбудителей инфекционных заболеваний, их устойчивость в окружающей среде (микробиология).

2. Виды химических соединений, их физико-химические свойства (неорганическая и органическая химия).

После изучения темы:

1.Сущность дезинфекции.

2.Сущность стерилизации.

3.Виды дезинфекции и их назначение.

4.Методы дезинфекции и средства дезинфекции.

5.Контрольэфективности дезинфекционных мероприятий.

6.Сущность стерилизации, ее назначение.

7. Методы, средства, этапы стерилизации изделий медицинского назначения..

8.Контроль качества стерилизации.

9.Кожные антисептики и методы обработки рук.

10.Особенности дезинфекционного режима в госпитальных условиях различных ЛПУ.

Студент должен уметь:

1.Организовать профилактическую, текущую и заключительную дезинфекцию.

2. Гигиенически и хирургически обрабатывать руки.

3.Выполнять процедуры одевания, снятии перчаток и спецодежды.

4. Обрабатывать инъекционное и операционное поле.

5.Проверить качество стерилизации изделий медицинского назначения по тестовому контролю и термоиндикаторам..

Студент должен владеть:

1. Методикой гигиенической и хирургической обработки рук.

2. Методикой предстерилизационной обработки инструментов.

3. Способами проведения профилактической и очаговой дезинфекции.

4. Методикой оценки качества стерилизации.

Вопросы для самоконтроля:

1.Понятие о дезинфекции, стерилизации.

2.Значение дезинфекции и стерилизации для предупреждения возникновения внутрибольничных инфекций среди пациентов и профессиональных заражений в ЛПУ.

3.Профилактическая дезинфекция в ЛПУ.

4.Очаговая дезинфекция в ЛПУ.

5.Особенности дезинфекционного режима и режима стерилизации с учетом особенностей возбудителей инфекционных заболеваний.

6. Асептика и антисептика. Инфекционная безопасность.

7.Методы и средства дезинфекции.

8.Методы и средства стерилизации.

9. Кожные антисептики. Виды обработки рук.

10. Обеззараживания воздуха, обеззараживание вентиляционных систем.

11.Контроль эффективности предстерилизационной подготовки.

12.Контроль качества стерилизации. Тесты.

13.Контроль качества дезинфекционного режима.

14.Инфекционный контроль (микробиологический).

15.Принципы зонирования функциональных помещений ЛПУ по классам чистоты.

Задания для самостоятельного выполнения:

1. В терапевтическом отделении стационара и на дому выявлены больные кишечной инфекцией с фекально-оральным механизмом передачи. До изоляции больного из терапевтического отделения и госпитализации больного, выявленного на дому, необходимо проводить текущую дезинфекцию. Кто проводит текущую дезинфекцию? Основные направления дезинфекционных мероприятий? На какое звено эпидемического процесса направлена текущая дезинфекция?

2. Из инфекционного отделения выписан больной брюшным тифом после выздоровления. Какие мероприятия следует провести до и после выписки?

Кто организует и проводит эти мероприятия?

3. Ежедневно во всех отделениях не инфекционного стационара проводится профилактическая дезинфекция при отсутствии обнаруженных источников инфекции, но предполагая их наличие. Цель профилактической дезинфекции? Основные направления профилактической дезинфекции? Кто проводит профилактическую дезинфекцию

4. В палату госпитализировали больных с ослабленным иммунитетом. Перед клиническим осмотром этих пациентов необходимо провести гигиеническую обработку рук. С какой целью эта процедура выполняется и техника выполнения процедуры?

5. Для проведения текущей дезинфекции в очаге необходимо приготовить растворы дезсредств. Какие правила необходимо выполнять для обеспечения качества дезинфекции и безопасности работы при приготовлении дезинфицирующих растворов?

6. При работе в процедурном кабинете невозможно знать об инфекционном статусе пациента. Какие ежедневные профилактические мероприятия необходимо проводить?

7. Какие дезинфекционные мероприятия следует провести при загрязнении рабочего стола кровью во время выполнения манипуляции?

8. Инфекционная безопасность после оказания помощи ВИЧ-инфицированному или больному СПИДом пациенту?

ТЕСТОВОЕ ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОКОНТРОЛЯ:

1.Дезинфекция это:

А. Комплекс мер, направленный на уничтожение возбудителей инфекционных болезней в окружающей человека среде;

Б. Комплекс мер, направленный на уничтожение членистоногих;

В. Комплекс мер, направленный на уничтожение грызунов;

Г. Комплекс мер, направленный на уничтожение промежуточных хозяев (гидробионтов) гельминтов.

2.Виды дезинфекции:

А. Очаговая текущая;

Б. Очаговая заключительная;

В. Очаговая профилактическая;

Г. Профилактическая.

3.Профилактическая дезинфекция проводится:

А. В парикмахерских (инструменты, белье);

Б. На водопроводной станции;

В. В квартире больного дизентерией, оставленного дома;

Г. В банях, прачечных, гостиницах, общественных туалетах.

4.Заключительная дезинфекция проводится:

А. В очаге при выявлении инфекционного больного;

Б. В очаге после госпитализации инфекционного больного;

В. В очаге после выздоровления инфекционного больного;

Г. В квартире после смерти инфекционного больного.

5.Заключительную дезинфекцию выполняют работники дезинфекционной службы в очаге:

А.Дизентерии, эшерихиоза;

Б. Сальмонеллёза;

В. Грибковых заболеваний кожи, волос, ногтей, чесотки;

Г. Туберкулеза, холеры, чумы.

6.Физический метод дезинфекции предусматривает использование:

А.Кипячения;

Б. Горячего воздуха;

В. Паровоздушной смеси, ультрафиолетовых лучей;

Г. Фильтрации, проветривания, пылесоса.

7.Требования к химическим средствам, используемых для дезинфекции:

А. Токсичность;

Б. Широкий спектр антимикробного действия, хорошая растворимость в воде;

В.Активность при комнатной температуре, в присутствии белка и других органических веществ;

Г.Достаточно бактериостатического действия.

8. Эффективность дезинфектантов зависит:

А. От температуры раствора дезинфектанта в окружающей среде:

Б. От концентрации дезинфектанта, экспозиции;

В. От атмосферного воздуха;

Г. От присутствия активаторов.

9. В качестве дезинфектантов используют:

А.Хлорсодержащие вещества;

Б. Фосфорорганические соединения;

В. Йод, бром и их соединения;

Г. Окислители, гуанидины, альдегиды, щелочи.

10.Стерилизация медицинская - это:

А. Уничтожение только вегетативных патогенных микроорганизмов;

Б. Уничтоже­ние только споровых патогенных форм;

В. Полное освобо­ждение объекта от всех микроорганизмов.

Дезинфекция, стерилизация - составные части противоэпидемической работы. Они направлены на уст­ранение путей и факторов передачи возбудителя, т. е. на вто­рое звено эпидемического процесса.

Эталоны тестовых заданий:

1-а

2-а,б,г

3-а,б,г

4-б,в,г

5-г

6-а,б,в,г

7-б,в,г

8-а,б,в,г

9-а,в,г

10-в

Дезинфекция и стерилизация медицинского инструментария

Медицинский инструментарий немедленно после работы с пациентом должен подвергаться дезинфекции. Некоторые изделия медицинского назначения, такие как зеркала (стомато­логические и ЛОР), после дезинфекции и отмывки от дезинфектанта готовы к последующему использованию, т. е. не тре­буют стерилизации.

Дезинфекцию инструментов осуществляют физическим или химическим методом. Среди физических методов наиболее распространенным является кипячение в воде в течение 30 мин, а с добавлением питьевой соды (20 г/л) в течение 15 мин. Однако чаще применяют химический метод дезин­секции при полном погружении инструментов в емкость с дезинфицирующим раствором.

Эту операцию проводят сразу после использования инструментов, не допуская их подсуши­вания. Разъемные изделия погружают в разобранном виде. Каналы изделий должны быть заполнены раствором без обра­зования воздушных пробок.

После окончания дезинфекции все инструменты промыва­ют проточной водой или отмывают методом погружения в ем­кости с водой, соблюдая минимальное время экспозиции и соотношение воды к объему, занимаемому изделиями (3:1). Все полости и каналы инструментария должны быть тщатель­но промыты от дезинфектанта, последние — с помощью шприца или водоструйного насоса.

Изделия медицинского назначения или части некоторых изделий, не соприкасающиеся непосредственно с пациентом, дезинфицируют методом протирания тампоном, смоченным в дезинфектанте.

Широкое использование химических средств дезинфекции требует проведения контроля качества дезинфектантов.

Контроль качества дезинфектантов состоит в определении содержания активнодействующего вещества с помощью лабо­раторных исследований или экспресс-методом.

С целью проведения лабораторного контроля проводят от­бор проб сухих дезинфицирующих средств и их растворов в соответствии с методикой и направляют для анализа в хими­ческую лабораторию.

Экспресс-метод контроля дезинфектантов позволяет в те­чение нескольких секунд определить концентрацию дейст­вующего вещества в растворе с помощью индикаторных бу­мажных полосок. Например, для хлорамина, хлорной извести разработан хлор-тест, для перекиси водорода — пероксид-тест, хлоргексидина биглюконата (гибитана) — ЧАС-тест, нейтрального анолита — миллихлор. При опускании индика­торной полоски в исследуемый раствор на 1сек. она меняет цвет в зависимости от концентрации активнодействующего веще­ства, которую определяют в процентах при сравнении инди­каторной полоски со шкалой цветности.

Стерилизация медицинская — полное освобождение веще­ства или предмета от микроорганизмов, т. е. уничтожение вегетативных и споровых патогенных и непатогенных форм путем воздействия на него физических или химических агентов.

Стерилизации подвергают все изделия медицинского на­значения, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контак­тирующие с кровью или инъекционными препаратами, а так­же отдельные виды медицинских инструментов, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболоч­кой и могут вызвать ее повреждение.

Обработка изделий, подлежащих стерилизации, включает три этапа: • дезинфекция, • предстерилизационная очистка,• стерилизация.

Первый этап — дезинфекция медицинских инструментов — описана в предыдущем разделе.

Второй этап обработки инст­рументов, подлежащих стерилизации, — предстерилизацион­ная очистка имеет целью удаление белковых, жировых, меха­ническихзагрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. Предстерилизационную очистку осуществляют механизированным или ручным способами с использованием разрешенных моющих средств. Разъемные изделия подверга­ют предстерилизационной очистке в разобранном виде и с за­полнением каналов.Механизированную очистку проводят в моечных машинах специального назначения: для игл, шприцев, различных инст­рументов.

Ручным способом обработку проводят в следующей после­довательности:

- промывание изделия проточной водой в течение 0,5 мин;

- замачивание при полном погружении изделия на 15 мин при 50 °С в моющем растворе 0,5 % "Биолот" или 0,5 % растворе перекиси водорода с 0,5 % одного из синтети­ческих моющих средств (CMC): "Лотос", "Лотос-авто­мат", "Астра", "Айна", "Маричка", "Прогресс";

- мойка каждого изделия в том же моющем растворе с по­мощью ватно-марлевого тампона или ерша в течение 0,5 мин;

- ополаскивание проточной, а затем дистиллированной водой;

- сушка горячим воздухом при температуре 75—87°С в су­шильных шкафах до полного исчезновения влаги.

Известно, что перекись водорода вызывает коррозию инст­рументов из коррозионно-неустойчивых металлов, поэтому в моющий раствор целесообразно добавлять ингибитор корро­зии в концентрации 1,4 г/л.

Раствор "Биолот" для замачивания и мойки изделий при­меняют однократно, а моющий раствор перекиси водорода с СМС можно использовать в течение суток.

В настоящее время созданы средства, сочетающие дезин­фицирующие и моющие свойства и позволяющие проводить одновременно дезинфекцию и предстерилизационную очистку„ инструментов в один этап ("Лизетол АФ", "Септодор-Форте-"Деконекс Денталь ББ", "Дюльбак", Гротанат"). С этой же¹целью можно применять "нейтральные" анолиты, получаемые на диафрагменных электрохимических установках из раство­ров поваренной соли. Католиты, получаемые в катодных ка­мерах установок, обладают только моющими свойствами, их применяют для предстерилизационной очистки инструментов из любых материалов.

Контроль качества предстерилизационной обработки про­водят выборочно (1% изделий каждого наименования) путем постановки проб на остаточную кровь (азопирамовой пробы). Азопирам, кроме следов крови, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения, хлорамина, хлорной извести, стирального по­рошка с отбеливателем, а также ржавчины и кислот.

При положительной пробе на кровь, моющее средство или жир всю партию контролируемых изделий подвергают повтор­ной обработке до получения отрицательных результатов.

Третий этап.

Стерилизацию изделий медицинского назначения осущест­вляют следующими методами:

•термическим (паровые, воздушные, гласперленовые сте­рилизаторы);

•химическим (растворы химических веществ, газовая сте­рилизация);

•радиационным (установки с радиоактивным источником излучения).

В последнее время на основе принципиально новых техно­логий созданы плазменные стерилизаторы, использующие энергию воздействия потока активированных молекул инерт­ного газа, ускоренных в электрическом поле, на поверхность стерилизуемых объектов, а также озоновые стерилизаторы.

Оптимальный метод стерилизации определяют с учетом материала, из которого состоит обрабатываемое изделие, его конструктивного исполнения, необходимости длительного со­хранения стерильности и др.

В практике работы ЛПУ наиболее широко применяют тер­мический метод стерилизации с использованием паровых и воздушных стерилизаторов.

Паровой метод стерилизации. В паровых стерилизаторах обрабатывают хирургическое белье, перевязочный материал, хирургические инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозиестойких материалов, стекла (в том числе шприцы с пометкой 200 °С), резины (катетеры, зонды, трубки, перчат­ки), текстильных материалов Стерилизующим агентом является насыщенный водяной пар под избыточным давлением. Температурный режим сте­рилизации в современных паровых стерилизаторах варьирует от 126 до 141°С, а время стерилизации соответственно от 3 до 10 мин. Эффективность стерилизации в паровом стерилизаторе за­висит от правильного выбора упаковки, соблюдения правил загрузки и плотности загрузки для свободного прохождения пара.

Воздушный метод стерилизации. В воздушных стерилизато­рах стерилизующим агентом является сухой горячий воздух, при этом не происходит увлажнения упаковки и изделий и не наблюдается коррозия коррозионно-неустойчивых металлов, не осложняются условия сохранения стерильности. Однако по эффективности воздействия на микроорганизмы он уступает пару, и для обеспечения стерилизации требуются более высо­кие температуры. Режимы стерилизации воздушным методом в стерилизаторах нового поколения характеризуются темпера­турой от 160 до 200°С и временем стерилизации от 30 до 120 мин. Воздушным методом стерилизуют хирургические и гинеко­логические инструменты, детали и узлы приборов и аппара­тов, в том числе изготовленных из коррозионно-неустойчи­вых материалов, инъекционные иглы, шприцы с пометкой 200 °С и др.

Газовый метод стерилизации. Стерилизацию в газовых сте­рилизаторах осуществляют при невысоких температурах (18— 80 °С) с применением оксида этилена, смеси ОБ (смесь окси­да этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5), а также паров раствора формалина в этиловом спирте. Изделия стерилизуют в упаковке из полиэтиленовой пленки, пергамента или бумаги оберточной марки. Газовую стерилиза­цию в качестве "холодного" метода используют для термола­бильных изделий медицинского назначения из полимерных материалов (резины, пластмассы), колющих, режущих хирур­гических инструментов, имеющих зеркальные поверхности, оптического оборудования (эндоскопы), кардиостимуляторов, предметов одноразового пользования.

Срок хранения изделий, стерилизованных газовым мето­дом в полиэтиленовой пленке,- годы, в остальных упаков­ках - 20 суток.

Метод стерилизации с помощью растворов химических средств. Для стерилизации рекомендованы растворы: анолит нейтральный, "Бианол", Гигасепт ФФ", глутаровый альдегид, Дюльбак растворимый", "Колдспор", "Лизоформин 300", Первомур" (4,8 %), перекись водорода (6 %), "Сайдекс".

В растворах химических веществ обрабатывают инструмен­ты из коррозиестойких материалов, изделия из стекла, пласт­масс, металла (сплавы титана), резины на основе силиконового каучука, в том числе эндоскопы. Лигатурный шовный ма­териал может быть стерилизован первомуром в концентрации 4,8 % в отличие от первомура для обработки рук (2,4 %).

Гласперленовые стерилизаторы используют для стерилиза­ции мелких стоматологических инструментов. В качестве сте­рилизующей среды — нагретые стеклянные шарики.

Радиационный метод стерилизации — ведущий метод про­мышленной стерилизации на предприятиях, выпускающих стерильные изделия медицинского назначения однократного применения: пластмассовые зонды, катетеры, трубки, систе­мы для взятия и переливания крови, акушерские комплекты, перевязочный материал.

Стерилизующим агентом являются ионизирующие гамма-и бета-излучения. Энергия используемых для стерилизации излучений не вызывает наведенной радиации у стерилизуемых изделий. Срок сохранения стерильности в индивидуальной упаковке из полиэтиленовой пленки исчисляется годами, но ограничивается сроком годности изделия к использованию и указывается на упаковке.

Контроль стерилизации проводят с помощью физического и химического методов.

Физический метод контроля работы стерилизаторов осуще­ствляют с помощью контрольно-измерительных приборов, фиксирующих температуру, давление и время.

Химический метод состоит в использовании химических тестов и термохимических индикаторов, которые размещают в стерилизационной камере в контрольных точках прикаждой закладке инструментов и материалов как вне упаковок, так и в стерилизационные коробки (биксы) и внутри упаковок. При обнаружении неудовлетворительных результатов контроля за­грузку считают нестерильной.

Эффективность стерилизации контролируют бактериологи­ческим методом, используя биотесты стерилизации, представ­ляющие собой объекты (флаконы, фольгу и др.), обсеменен­ные тест-микроорганизмами, например спорами B.stearother-mophilus или В. licheniformis. На основании гибели тест-мик­роорганизмов делают заключение об эффективности про­цесса.

Контроль стерильности заключается в определении на из­делиях, подвергнутых стерилизации, тест-микроорганизмов, способных к размножению.

Дезинфекционный режим в лечебно-профилактических учреждениях. Дезинфекционные мероприятия в ЛПУ занимают главенст­вующее место в комплексе профилактических и противоэпи­демических мероприятий и направлены на предупреждение возникновения, ограничение распространения и ликвидацию внутрибольничной инфекции (ВБИ).

Объем и вид проводимой в ЛПУ дезинфекции определяют профиль стационара, наличие больных с инфекционными за­болеваниями и показатель заболеваемости ВБИ. В стациона­рах постоянно осуществляют профилактическую, а по показа­ниям — очаговую (текущую и заключительную) дезинфекцию.

Особенностью этой работы является то, что она выполня­ется в присутствии больных и при непрерываемой деятельно­сти медицинского и обслуживающего персонала, что опреде­ляет выбор средств и методов дезинфекции. Конкретный план дезинфекционных мероприятий в ЛПУ составляют с учетом наиболее значимых в качестве факторов передачи объектов внешней среды, наиболее часто и массивно обсемененных па­тогенными и условно-патогенными микроорганизмами- возбудителями ВБИ. Ответственность за организацию и проведение комплекса санитарно-гигиенических и противоэпидемических мероприя­тий возложена на главного врача лечебно-профилактического учреждения. Старшая медицинская сестра ответственна за обучение среднего и младшего персонала.

Наиболее значимым фактором передачи возбудителя инфекционных болезней в условиях ЛПУ являются руки медицинского пер­сонала, что обосновывает необходимость систематической их обработки. Различают гигиеническую и хирургическую обра­ботку рук медицинского персонала.

Гигиеническая обработка рук предусматривает удаление или уничтожение транзиторной (поверхностной) патогенной или условно-патогенной микрофлоры для предупреждения рас­пространения ее на окружающие объекты и пациентов. Гигие­ническую обработку обязан проводить весь персонал регуляр­но, используя один из следующих способов:

• тщательное мытье рук туалетным или хозяйственным мылом при двукратном намыливании их с последую­щим, вытиранием стерильной салфеткой;

• тщательное мытье рук антисептическими мылами в те­чение 30сек. с последующим смыванием пены;

• протирание рук в течение 1—2 мин тампоном, смочен­ным в одном из дезинфицирующих растворов (70 % этиловом спирте, 0,5 % хлоргексидине биглюконате в 70 % этиловом спирте);

• нанесение на поверхности ладоней 3 мл одного из кож­ных антисептических препаратов и втирание в кожу в течение 30 с ("АХД-2000-специаль", "Октенидерм", "Октениман", "Сагросепт", "Спитадерм", "Велтосепт" и др.).

Способ обработки определяют выполняемая работа и воз­можность контаминации рук условно-патогенными и патогенными микроорганизмами. После манипуляций, связанных с возможностью попадания на руки патогенной микрофлоры, обязательно применяют дезинфицирующие средства, включая те случаи, когда персонал работает в перчатках.

Хирургическая дезинфекция рук обязательна для персонала, участвующего в операции, и проводится после предваритель­ного мытья рук с мылом в течение 1 мин при двукратном на­мыливании. Антисептик наносят на вытертые насухо стериль­ной салфеткой руки Для хирургической обработки рук используют рецептуру С-4, 0,5 % хлоргексидин биглюконат в 70 % этиловом спирте, "Велтосепт", 1 % дегмицид и др.

В приемном отделении (прием больного- вторая наиболее значимая группа факторов риска) после осмотра больного: использованные термометры полностью погружают в 2 % раствор хлорамина на 5 мин, затем промывают проточной водой, хранят в промаркированной емкости в сухом виде; дезинфи­цирующим раствором промывают клеенку, покрывающую ку­шетку. Всех больных осматривают на педикулез. В специаль­ном помещении проводят полную санитарную обработку по­ступающих больных.

В лечебных отделениях перед поступлением больного (третья группа факторов риска) обра­батывают дезинфицирующим раствором кровать, тумбочку, подставку для подкладного судна. Постельные принадлежно­сти дезинфицируют в паровой камере или паровоздушным способом; палаты проветривают 4 раза в день. Ванну для больных и смену постельного и нательного белья назначают 1 раз в 7—10 дней.

В процедурном кабинете стерильный стол накрывают на срок 6 ч. Во время работы корнцанги и пинцеты для стериль­ного материала хранят в дезинфицирующем растворе (1 % водный раствор хлоргексидина биглюконата, 1 % раствор хлорамина).

Инъекционное поле двукратно протирают ватными шари­ками, смоченными 70 % спиртом или другим предназначен­ным для этих целей антисептиком.

Инъекционные иглы и шприцы после использования по­мещают в емкости с дезинфицирующим раствором, промывая их перед погружением и заполняя дезинфицирующим раство­ром. Шприцы однократного применения после дезинфекции направляют на утилизацию.

Смену спецодежды проводят не реже 2 раз в неделю. Теку­щую уборку выполняют 2 раза в день влажным способом с применением дезинфицирующих средств. Для бактерицидно­го облучения помещений используют комбинированные или рециркуляционные лампы, которые включают после уборки в конце рабочего дня на 30 мин. Генеральную уборку проводят 1 раз в неделю.

В операционном блоке стерильные инструменты и материал, необходимые для операции, выкладывают на стерильный стол перед началом операции. Для шитья используют только сте­рильный ампулированный шелк, капрон или кетгут. Кожу па­циента обрабатывают кожным антисептиком, для изоляции операционного поля применяют стерильные простыни и пе­ленки. Использованные инструменты и материал собирают в специально выделенную емкость и выносят из операционной.

Текущую уборку операционного блока проводят не реже 2 раз в день с применением дезинфектантов и УФ-облучения, а генеральную уборку — 1 раз в неделю 6 % раствором переки­си водорода и 0,5 % моющим средством, затем дополняют УФ-обработкой.

В "чистых" зонах стационаров (операционных блоках, бок­сах для гематологических больных и т. д.) проводят очистку и дезинфекцию воздуха с использованием специализированных фильтров тонкой очистки воздуха (типа НЕРА), установок ла­минированных потоков воздуха, рециркуляторов, принцип действия которых основан на принудительном покачивании воздуха через аппарат, в котором размещены УФ-лампы.

В палатах для больных анаэробной инфекцией устанавлива­ют потолочные и настенные бактерицидные облучатели. Па­латы обрабатывают 2 раза в день 6 % раствором перекиси во­дорода с 0,5 % моющим средством.

В профильных отделениях для больных гнойными хирургиче­скими заболеваниями в приемном отделении после осмотра больного персоналу следует обрабатывать руки 70 % этиловым спиртом или 0,5 % раствором хлоргексидина биглюконата в 70 % этиловом спирте (5—8 мл раствора наливают на ладони и втирают в течение 2 мин), перчатки сбрасывают в емкость с дезинфицирующим раствором. Персоналу выдают индивиду­альные полотенца на 1 день.

В отделении уборку проводят 2 раза в день мыльно-содо­вым раствором, палаты оборудуют бактерицидными УФ-облучателями закрытого типа. При перевязках больного врач и ме­дицинская сестра используют клеенчатые фартуки, которые протирают ветошью, смоченной дезинфицирующим раство­ром (1 % раствором хлорамина, 0,75 % ПВК и др.). В инфекционном отделении выделения больного (рвотные массы, испражнения) обеззараживают сухой хлорной изве­стью, нейтральным гипохлоритом кальция, гипохлоритом кальция техническим из расчета 1:5 в течение 2 ч. После уда­ления выделений емкости обеззараживают при их полном по­гружении в дезраствор. Термометры после использования це­ликом погружают в емкость с 2 % раствором хлорамина на 5 мин, затем промывают.

На пищеблоке соблюдают требования по режиму предпри­ятий общественного питания. Персонал сдает зачет по санитарному минимуму. Посуду обрабатывают в моечных буфетов лечебных отделений.

Текущую уборку операционного блока проводят не реже 2 раз в день с применением дезинфектантов и УФ-облучения, а генеральную уборку — 1 раз в неделю 6 % раствором переки­си водорода и 0,5 % моющим средством, затем дополняют УФ-обработкой.

В "чистых" зонах стационаров (операционных блоках, бок­сах для гематологических больных и т. д.) проводят очистку и дезинфекцию воздуха с использованием специализированных фильтров тонкой очистки воздуха (типа НЕРА), установок ла­минированных потоков воздуха, рециркуляторов, принцип действия которых основан на принудительном покачивании воздуха через аппарат, в котором размещены УФ-лампы.

В палатах для больных анаэробной инфекцией устанавлива­ют потолочные и настенные бактерицидные облучатели. Па­латы обрабатывают 2 раза в день 6 % раствором перекиси во­дорода с 0,5 % моющим средством.

В профильных отделениях для больных гнойными хирургиче­скими заболеваниями в приемном отделении после осмотра больного персоналу следует обрабатывать руки 70 % этиловым спиртом или 0,5 % раствором хлоргексидина биглюконата в 70 % этиловом спирте (5—8 мл раствора наливают на ладони и втирают в течение 2 мин), перчатки сбрасывают в емкость с дезинфицирующим раствором.

Персоналу выдают индивиду­альные полотенца на 1 день.

В отделении уборку проводят 2 раза в день мыльно-содо­вым раствором, палаты оборудуют бактерицидными УФ-облучателями закрытого типа. При перевязках больного врач и ме­дицинская сестра используют клеенчатые фартуки, которые протирают ветошью, смоченной дезинфицирующим раство­ром (1 % раствором хлорамина, 0,75 % ПВК и др.).

В инфекционном отделении выделения больного (рвотные массы, испражнения) обеззараживают сухой хлорной изве­стью, нейтральным гипохлоритом кальция, гипохлоритом кальция техническим из расчета 1:5 в течение 2 ч. После уда­ления выделений емкости обеззараживают при их полном по­гружении в дезраствор. Термометры после использования це­ликом погружают в емкость с 2 % раствором хлорамина на 5 мин, затем промывают.

На пищеблоке соблюдают требования по режиму предпри­ятий общественного питания. Персонал сдает зачет по санитарному минимуму. Посуду обрабатывают в моечных буфетов лечебных отделений. Для этого предназначены баки для зама­чивания и кипячения посуды, моющие и дезинфицирующие средства и маркированный уборочный инвентарь. Посуду сле­дует кипятить в течение 15 мин или в течение 30 мин замачи­вать в одном из растворов: 0,5 % хлорамин, 0,1 % сульфохлорантин, 1 % дихлор-1, 0,05 % дезоксон-1 с последующим мыть­ем. Уборочный инвентарь маркируют и используют только по назначению.